NAFLD legata all'età: l'uso dei probiotici come intervento terapeutico di supporto, parte 4
Jun 26, 2023
Riferimenti (segue)
107. Azad, MAK; Sarker, M.; Illuminato.; Yin, J. Specie probiotiche nella modulazione del microbiota intestinale: una panoramica. Ricerca BioMed. Int. 2018, 2018, 1–8. [CrossRef]
Il glicoside di cistanche può anche aumentare l'attività della SOD nei tessuti del cuore e del fegato e ridurre significativamente il contenuto di lipofuscina e MDA in ciascun tessuto, eliminando efficacemente vari radicali reattivi dell'ossigeno (OH-, H₂O₂, ecc.) e proteggendo dai danni al DNA causati da radicali OH. I glicosidi feniletanoidi di Cistanche hanno una forte capacità di scavenging dei radicali liberi, una maggiore capacità riducente rispetto alla vitamina C, migliorano l'attività della SOD nella sospensione dello sperma, riducono il contenuto di MDA e hanno un certo effetto protettivo sulla funzione della membrana dello sperma. I polisaccaridi Cistanche possono migliorare l'attività di SOD e GSH-Px negli eritrociti e nei tessuti polmonari di topi sperimentalmente senescenti causati dal D-galattosio, nonché ridurre il contenuto di MDA e collagene nei polmoni e nel plasma e aumentare il contenuto di elastina, hanno un buon effetto scavenging su DPPH, prolunga il tempo di ipossia nei topi senescenti, migliora l'attività della SOD nel siero e ritarda la degenerazione fisiologica del polmone nei topi senescenti sperimentalmente Con la degenerazione morfologica cellulare, gli esperimenti hanno dimostrato che Cistanche ha la buona capacità antiossidante e ha il potenziale per essere un farmaco per prevenire e curare le malattie dell'invecchiamento cutaneo. Allo stesso tempo, l'echinacoside in Cistanche ha una significativa capacità di eliminare i radicali liberi DPPH e ha la capacità di eliminare le specie reattive dell'ossigeno e prevenire la degradazione del collagene indotta dai radicali liberi, e ha anche un buon effetto di riparazione sul danno dell'anione dei radicali liberi della timina.



108. Duncan, SH; Flint, HJ Probiotici e prebiotici e salute nelle popolazioni che invecchiano. Maturità 2013, 75, 44–50. [CrossRef] [PubMed]
109. Reid, G.; Jass, J.; Sebulskij, MT; McCormick, JK Potenziali usi dei probiotici nella pratica clinica. Clino. Microbiolo. Rev. 2003, 16, 658–672. [CrossRef]
110. Sanklecha, M.; Verma, L.; Pai, U.; Mishra, S.; Maqsood, S.; Birla, A. Lactobacillus Rhamnosus GG Valutazione nella diarrea acuta (LEAD): uno studio osservazionale. Cureus 2022. [CrossRef]
111. Ishida, Y.; Nakamura, F.; Kanzato, H.; Sawada, D.; Hirata, H.; Nishimura, A.; Kajimoto, O.; Fujiwara, S. Effetti clinici del ceppo Lactobacillus acidophilus L-92 sulla rinite allergica perenne: uno studio in doppio cieco, controllato con placebo. J. Caseificio Sci. 2005, 88, 527–533. [CrossRef]
112. Surawicz, CM; Elmer, GW; Speelmann, P.; McFarland, LV; Chinn, J.; Van Belle, G. Prevenzione della diarrea associata agli antibiotici di Saccharomyces boulardii: uno studio prospettico. Gastroenterologia 1989, 96, 981–988. [CrossRef]
113. Zhang, B.; Un, J.; Shimada, T.; Liu, S.; Maeyama, K. La somministrazione orale di Enterococcus faecalis FK -23 sopprime lo sviluppo delle cellule Th17 e attenua le risposte allergiche delle vie aeree nei topi. Int. J. Mol. Med. 2012, 30, 248–254. [CrossRef]
114. Wang, I.-J.; Wang, J.-Y. I bambini con dermatite atopica mostrano un miglioramento clinico dopo l'esposizione al lattobacillo. Clino. Esp. Allergia 2015, 45, 779–787. [CrossRef] [PubMed]
115. Kim, JY; Kwon, JH; Ah, SH; Lee, SI; Han, YS; Choi, YO; Lee, SI; Ah, KM; Ji, GE Effect of Probiotic Mix (Bifidobacterium Bifidum, Bifidobacterium Lactis, Lactobacillus Acidophilus) nella prevenzione primaria dell'eczema: uno studio in doppio cieco, randomizzato, controllato con placebo. Immunol pediatrico di allergia. 2010, 21, e386–e393. [CrossRef]
116. Gaziano, R.; Sabbatini, S.; Roselletti, E.; Perito, S.; Monari, C. Saccharomyces Cerevisiae a base di probiotici come nuovi agenti antimicrobici per prevenire e curare le infezioni vaginali. Davanti. Microbiolo. 2020, 11, 718. [CrossRef] [PubMed]
117. Homayouni, A.; Bastani, P.; Ziyadi, S.; Mohammad-Alizadeh-Charandabi, S.; Ghalibaf, M.; Mortazaviano, AM; Mehrabany, EV Effetti dei probiotici sulla ricorrenza della vaginosi batterica: una revisione. J. Basso. Genetta. Tratto. Dis. 2014, 18, 79–86. [CrossRef] [PubMed]
118. Moludi, J.; Kafil, SA; Quaisar, SA; Golizadeh, P.; Alizadeh, M.; Vayghyan, HJ Effetto dell'integrazione di probiotici insieme alla restrizione calorica sull'endotossiemia metabolica e marcatori di infiammazione nei pazienti con malattia coronarica: uno studio clinico randomizzato controllato in doppio cieco con placebo. Nutr. J. 2021, 20, 47. [CrossRef] [PubMed]
119. Yang, B.; Yue, Y.; Chen, Y.; Ding, M.; Li, B.; Wang, L.; Wang, D.; Stanton, C.; Ross, RP; Zhao, J.; et al. Lactobacillus Plantarum CCFM1143 Allevia la diarrea cronica attraverso la regolazione dell'infiammazione e la modulazione del microbiota intestinale: uno studio in doppio cieco, randomizzato, controllato con placebo. Davanti. Immunolo. 2021, 12, 746585. [CrossRef] [PubMed]
120. Gamallat, Y.; Meyia, A.; Kuugbee, ED; Ago, AM; Chiwala, G.; Awadasseid, A.; Bamba, D.; Zhang, X.; Shang, X.; Luo, F.; et al. Lactobacillus Rhamnosus ha indotto l'apoptosi delle cellule epiteliali, migliora l'infiammazione e previene lo sviluppo del cancro al colon in un modello animale. Biomed. Farmacotere. 2016, 83, 536–541. [CrossRef]
121. Kuugbee, ED; Shang, X.; Gamallat, Y.; Bamba, D.; Awadasseid, A.; Suliman, Massachusetts; Zang, S.; Maggio.; Chiwala, G.; Xin, Y.; et al. Il cambiamento strutturale nel microbiota da parte di un cocktail probiotico migliora la barriera intestinale e riduce il cancro tramite la segnalazione TLR2 in un modello di cancro al colon nel ratto. Scavare. Dis. Sci. 2016, 61, 2908-2920. [CrossRef]
122. Boudeau, J.; Glasser, A.-L.; Julien, S.; Colombel, J.-F.; Darfeuille-Michaud, A. Effetto inibitorio del ceppo probiotico Escherichia Coli Nissle 1917 sull'adesione e l'invasione delle cellule epiteliali intestinali da parte di ceppi aderenti-invasivi, E. Coli isolati da pazienti con malattia di Crohn: EFFETTO INIBITORIO DEL PROBIOTICO E. COLI NISSLE 1917 ON COLONIZZAZIONE AIEC. Alimento. Pharmacol. Là. 2003, 18, 45-56. [CrossRef]
123. Kelesidis, T.; Pothoulakis, C. Efficacia e sicurezza del probiotico Saccharomyces boulardii per la prevenzione e la terapia dei disturbi gastrointestinali. Là. Avv. Gastroenterolo. 2012, 5, 111–125. [CrossRef]
124. Yan, F.; Li, N.; Shi, J.; Li, H.; Yue, Y.; Jiao, W.; Vanga, N.; Canzone, Y.; Huo, G.; Li, B. Lactobacillus acidophilus allevia il diabete di tipo 2 regolando il glucosio epatico, il metabolismo lipidico e il microbiota intestinale nei topi. Funzione alimentare 2019, 10, 5804–5815. [CrossRef]
125. Yang, B.; Huang, Z.; Lui, Z.; Yue, Y.; Zhou, Y.; Ross, RP; Stanton, C.; Zhang, H.; Zhao, J.; Chen, W. Effetto protettivo di Bifidobacterium Bifidum FSDJN7O5 e Bifidobacterium Breve FHNFQ23M3 sulla diarrea causata da Escherichia Coli enterotossigenico. Funzione alimentare 2021, 12, 7271–7282. [CrossRef] [PubMed]
126. Sullivan, Å.; Bennet, R.; Viitanen, M.; Palmgren, AC; Nord, CE Influenza del Lactobacillus F19 sulla microflora intestinale nei bambini e negli anziani e impatto sulle infezioni da Helicobacter Pylori. Microb. Ecol. Salute Dis. 2002, 14, 17–21. [CrossRef]
127. Hlivak, P.; Odraska, J.; Ferencik, M.; Ebringer, L.; Jahnova, E.; Mikes, Z. L'applicazione di un anno del ceppo probiotico Enterococcus Faecium M-74 riduce i livelli sierici di colesterolo. Bratisl Lek Listy 2005, 106, 67–72.
128. Pakdaman, Minnesota; Udani, JK; Molina, Giappone; Shahani, M. Gli effetti del ceppo DDS-1 di Lactobacillus sul sollievo sintomatico per l'intolleranza al lattosio: uno studio clinico crossover randomizzato, in doppio cieco, controllato con placebo. Nutr. J. 2015, 15, 56. [CrossRef] [PubMed]
129. Lata, J.; Novotny, I.; Pˇríbramská, V.; Juránková, J.; Friˇc, P.; Kroupa, R.; Stib ˚urek, O. L'effetto dei probiotici sulla flora intestinale, il livello di endotossina e il punteggio Child-Pugh nei pazienti cirrotici: risultati di uno studio randomizzato in doppio cieco. Euro. J. Gastroenterolo. Hepatol. 2007, 19, 1111–1113. [CrossRef] [PubMed]
130. Lunia, MK; Sharma, BC; Sharma, P.; Sachdeva, S.; Srivastava, S. I probiotici prevengono l'encefalopatia epatica nei pazienti con cirrosi: uno studio controllato randomizzato. Clino. Gastroenterolo. Hepatol. 2014, 12, 1003–1008.e1. [CrossRef]
131. Zhu, G.; Mamma, F.; Wang, G.; Vanga, Y.; Zhao, J.; Zhang, H.; Chen, W. Bifidobacteria attenua lo sviluppo di disturbi metabolici, con differenze inter e intra-specie. Funzione alimentare 2018, 9, 3509–3522. [CrossRef]
132. Sonn, M.; Na, GY; Chu, J.; Joung, H.; Kim, BK; Lim, S. Efficacia e sicurezza del Lactobacillus Plantarum K50 sui lipidi nei coreani con obesità: uno studio clinico randomizzato, controllato in doppio cieco. Davanti. Endocrinolo. 2022, 12, 790046. [CrossRef]
133. Anukam, KC; Hayes, K.; Summers, K.; Reid, G. Probiotic Lactobacillus Rhamnosus GR-1 e Lactobacillus Reuteri RC-14 possono aiutare a sottoregolare TNF-alfa, IL-6, IL-8, IL-10 e IL-12 (P70) nella vescica neurogena del paziente con lesioni al midollo spinale con infezioni del tratto urinario: uno studio a due casi. Avv. Urol. 2009, 2009, 1–5. [CrossRef]
134. Sivamaruthi, BS; Kesika, P.; Chaiyasut, C. Una recensione sulle proprietà antietà dei probiotici. Int. J. App. Farm. 2018, 10, 23. [CrossRef]
135. Salazar, N.; Valdés-Varela, L.; Gonzalez, S.; Guemonde, M.; de los Reyes-Gavilán, CG Nutrition e il microbioma intestinale negli anziani. Microbi intestinali 2017, 8, 82–97. [CrossRef] [PubMed]
136. Lahtinen, SI; Tammela, L.; Korpela, J.; Parhiala, R.; Ahokoski, H.; Mykkänen, H.; Salminen, SJ I probiotici modulano il microbiota del bifidobatterio dei residenti delle case di cura per anziani. ETÀ 2009, 31, 59–66. [CrossRef] [PubMed]
137 Rampelli S.; Candelà, M.; Severgnini, M.; Biagi, E.; Turroni, S.; Roselli, M.; Carnevaleli, P.; Donini, L.; Brigidi, P. A ProbioticsContaining Biscuit modula il microbiota intestinale negli anziani. J. Nutr. Salute Invecchiamento 2013, 17, 166–172. [CrossRef] [PubMed]
138. Valentini, L.; Pinto, A.; Bourdel-Marchasson, I.; Ostano, R.; Brigidi, P.; Turroni, S.; Hrelia, S.; Hrelia, P.; Bereswill, S.; Fisher, A.; et al. Impatto della dieta personalizzata e dell'integrazione di probiotici su infiammazione, parametri nutrizionali e microbiota intestinale: il "Progetto RISTOMED": studio controllato randomizzato su persone anziane sane. Clino. Nutr. 2015, 34, 593–602. [CrossRef]
139. Ahmed, M.; Prassad, J.; Gill, H.; Stevenson, L.; Gopal, P. Impatto del consumo di diversi livelli di Bifidobacterium Lactis HN019 sulla microflora intestinale di soggetti umani anziani. J. Nutr. Salute Invecchiamento 2007, 11, 26–31.
140. Azad, MAK; Sarker, M.; Wan, D. Effetti immunomodulatori dei probiotici sui profili delle citochine. Ricerca BioMed. Int. 2018, 2018, 8063647. [CrossRef]
141. María Remes-Troche, J.; Coss-Adame, E.; Ángel Valdovinos-Díaz, M.; Gómez-Escudero, O.; Eugenia Icaza-Chávez, M.; Antonio Chávez-Barrera, J.; Zárate-Mondragón, F.; Antonio Velarde-Ruíz Velasco, J.; Rafael Aceves-Tavares, G.; Antonio Lira-Pedrin, M.; et al. Lactobacillus acidophilus LB: un utile farmacobiotico per il trattamento dei disturbi digestivi. Là. Avv. Gastroenterolo. 2020, 13, 175628482097120. [CrossRef]
142. Sanchez, B.; Delgado, S.; Blanco-Míguez, A.; Lourenço, A.; Guemonde, M.; Margolles, A. Probiotici, microbiota intestinale e loro influenza sulla salute e sulla malattia dell'ospite. Mol. Nutr. ricerca alimentare 2017, 61, 1600240. [CrossRef]
143. Hemarajata, P.; Versalovic, J. Effetti dei probiotici sul microbiota intestinale: meccanismi di immunomodulazione e neuromodulazione intestinale. Là. Avv. Gastroenterolo. 2013, 6, 39–51. [CrossRef]
144. Chen, L.; Li, H.; Li, J.; Chen, Y.; Yang, Y. Il trattamento con Lactobacillus Rhamnosus GG migliora la permeabilità intestinale e modula la disbiosi del microbiota in un modello sperimentale di sepsi. Int. J. Mol. Med. 2019. [CrossRef] [PubMed]
145. Forsyth, CB; Farhadi, A.; Jakate, SM; Tang, Y.; Sceicco, M.; Keshavarzian, A. Il trattamento con Lactobacillus GG migliora lo stress ossidativo intestinale indotto dall'alcol, la perdita intestinale e il danno epatico in un modello di ratto di steatoepatite alcolica. Alcol 2009, 43, 163–172. [CrossRef] [PubMed]
146. Tao, Y.; Drabik, KA; Waypa, ST; Musch, MW; Alverdy, JC; Schneewind, O.; Chang, EB; Petrof, fattori solubili di EO da Lactobacillus GG attivano MAPK e inducono proteine citoprotettive da shock termico nelle cellule epiteliali intestinali. Sono. J. Physiol.-Cell Physiol. 2006, 290, C1018–C1030. [CrossRef] [PubMed]
147. Parco, J.-S.; Choi, JW; Jhun, J.; Kwon, JY; Lee, B.-I.; Yang, DO; Park, S.-H.; Cho, M.-L. Lactobacillus acidophilus migliora l'infiammazione intestinale in un modello murino di colite acuta regolando l'equilibrio delle cellule Th17 e Treg e lo sviluppo della fibrosi. J.Med. Cibo 2018, 21, 215–224. [CrossRef]
148 Vemuri, R.; Shinde, T.; Gundamaraju, R.; Gondola, S.; Karpe, A.; Beale, D.; Martoni, C.; Eri, R. Lactobacillus Acidophilus DDS-1 modula il microbiota intestinale e migliora i profili metabolici nei topi che invecchiano. Nutrienti 2018, 10, 1255. [CrossRef]
149. Li, X.; Huang, Y.; Canzone, L.; Xiao, Y.; Lu, S.; Xu, J.; Li, J.; Ren, Z. Lactobacillus Plantarum previene l'obesità attraverso la modulazione del microbiota intestinale e dei metaboliti nei topi con alimentazione ricca di grassi. J. Funzione. Alimenti 2020, 73, 104103. [CrossRef]
150.Graziani, C.; Petito, V.; Del Chierico, F.; Mangiola, F.; Pecere, S.; Schiavoni, E.; Pizzoferrato, M.; Lopetuso, LR; Putignano, L.; Gasbarrini, A.; et al. P115 Escherichia Coli Nissle 1917 Modulate la composizione del microbiota intestinale nei pazienti con colite ulcerosa. Colite di J. Crohn 2017, 11, S133–S134. [CrossRef]
151. Schlee, M.; Wehkamp, J.; Altenhoefer, A.; Oelschlaeger, TA; Stange, EF; Fellermann, K. L'induzione di Human -Defensin 2 da parte del probiotico Escherichia Coli Nissle 1917 è mediata da Flagellina. Infettare. Imm. 2007, 75, 2399–2407. [CrossRef]
152. Everard, A.; Matamoros, S.; Geurts, L.; Delzenne, Nuovo Messico; Cani, PD La somministrazione di Saccharomyces Boulardii modifica il microbiota intestinale e riduce la steatosi epatica, l'infiammazione di basso grado e la massa grassa nei topi obesi e diabetici di tipo 2 Db/Db. mBio 2014, 5, e01011–e01014. [CrossRef]
153. Grander, C.; Adolfo, TE; Wieser, V.; Basso, P.; Wrzosek, L.; Gyongyosi, B.; reparto, DV; Grabherr, F.; Gerner, RR; Pfister, A.; et al. Il recupero della deplezione di Akkermansia Muciniphila indotta da etanolo migliora la malattia epatica alcolica. Gut 2018, 67, 891–901. [CrossRef]
154. O'Toole, PW; Marchesi, JR; Hill, C. Probiotici di nuova generazione: lo spettro dai probiotici ai bioterapeutici vivi. Nat. Microbiol 2017, 2, 17057. [CrossRef] [PubMed]
155. Yao, M.; Qv, L.; Lu, Y.; Wang, B.; Berglund, B.; Li, L. Un aggiornamento sull'efficacia e la funzionalità dei probiotici per il trattamento della steatosi epatica non alcolica. Ingegneria 2021, 7, 679–686. [CrossRef]
156. Roh, YS; Seki, E. Recettori Toll-like nella malattia epatica alcolica, steatoepatite non alcolica e cancerogenesi: il ruolo del TLR in ALD, NASH e HCC. J. Gastroenterolo. Hepatol. 2013, 28, 38–42. [CrossRef] [PubMed]
157. Wang W.; Shi, LP; Shi, L.; Xu, L. Efficacia dei probiotici nel trattamento della steatosi epatica non alcolica. Zhonghua Nei Ke Za Zhi 2018, 57, 101–106. [CrossRef]
158 Wieland, A.; Franco, DN; Harnke, B.; Bambha, K. Revisione sistematica: disbiosi microbica e steatosi epatica non alcolica. Alimento. Farm. 2015, 42, 1051–1063. [CrossRef]
159. Mantovani, A.; Dalbeni, A. Trattamenti per NAFLD: stato dell'arte. Int. J. Mol. Sci. 2021, 22, 2350. [CrossRef]
160. Borrelli, A.; Bonelli, P.; Tuccillo, FM; Goldfine, carta d'identità; Evans, JL; Buonaguro, FM; Mancini, A. Ruolo del microbiota intestinale e dello stress ossidativo nella progressione della steatosi epatica non alcolica verso l'epatocarcinoma: approcci terapeutici attuali e innovativi. Redox Biol. 2018, 15, 467–479. [CrossRef] [PubMed]
161. Perumpail, B.; Li, A.; Giovanni, N.; Sallam, S.; Shah, N.; Kwong, W.; Cholankeril, G.; Kim, D.; Ahmed, A. Le implicazioni terapeutiche del microbioma intestinale e dei probiotici nei pazienti con NAFLD. Malattie 2019, 7, 27. [CrossRef] [PubMed]
162. Lei, K.; Li, Y.; Vanga, Y.; Wen, J.; Wu, H.; Yu, D.; Li, W. Effetto dell'integrazione alimentare di Bacillus Subtilis B10 sui parametri biochimici e molecolari nel siero e nel fegato di topi obesi indotti da una dieta ricca di grassi. Università J.Zhejiang. Sci. B 2015, 16, 487–495. [CrossRef]
163. Vajrò, P.; Mandato, C.; Veropalumbo, C.; De Micco, I. Probiotici: un possibile ruolo nel trattamento della steatosi epatica non alcolica per adulti e pediatrica. Anna. Hepatol 2013, 12, 161–163. [CrossRef]
164. Li, C.; Nie, S.-P.; Zhu, K.-X.; Ding, D.; Li, C.; Xiong, T.; Xie, M.-Y. Il Lactobacillus Plantarum NCU116 migliora la funzionalità epatica, lo stress ossidativo e il metabolismo lipidico nei ratti con steatosi epatica non alcolica indotta da una dieta ricca di grassi. Funzione alimentare 2014, 5, 3216–3223. [CrossRef] [PubMed]
165. Zhao, Z.; Wang, C.; Zhang, L.; Zhao, Y.; Duan, C.; Zhang, X.; Gao, L.; Li, S. Lactobacillus Plantarum NA136 migliora la steatosi epatica non alcolica modulando la via AMPK/Nrf2. Appl. Microbiolo. Biotecnol. 2019, 103, 5843–5850. [CrossRef]
166. Xin, J.; Zeng, D.; Wang, H.; Ni, X.; Yi, D.; Pan, K.; Jing, B. Prevenzione della steatosi epatica non alcolica attraverso il Lactobacillus Johnsonii BS15 attenuando l'infiammazione e la lesione mitocondriale e migliorando l'ambiente intestinale nei topi obesi. Appl. Microbiolo. Biotecnol. 2014, 98, 6817–6829. [CrossRef] [PubMed]
167. Ritz, Y.; Bardos, G.; Claus, A.; Ehrmann, V.; Bergheim, I.; Schwiertz, A.; Bischoff, SC Lactobacillus Rhamnosus GG protegge dalla steatosi epatica non alcolica nei topi. PLoS ONE 2014, 9, e80169. [CrossRef]
168. Ren, T.; Huang, C.; Cheng, M. Il mirtillo dietetico e i bifidobatteri attenuano la steatosi epatica non alcolica nei ratti influenzando la via di segnalazione mediata dalla SIRT1-. Ossidativo Med. Cellula. Longev. 2014, 2014, 1–12. [CrossRef] [PubMed]
169. Xu, R.; pallido, Y.; Zanna, Q.; Lu, W.; Cai, W. L'integrazione con probiotici modifica la flora intestinale e attenua l'accumulo di grasso nel fegato nel modello di malattia del fegato grasso non alcolico del ratto. J.Clin. Biochimica. Nutr. 2011, 50, 72–77. [CrossRef] [PubMed]
170. Bubnov, RV; Babenko, LP; Lazarenko, LM; Mokrozub, VV; Demchenko, OA; Nechypurenko, VV; Spivak, MY Studio comparativo degli effetti probiotici dei ceppi di Lactobacillus e Bifidobacteria sui livelli di colesterolo, morfologia epatica e microbiota intestinale nei topi obesi. EPMA J. 2017, 8, 357–376. [CrossRef]
171. Xue, L.; Lui, J.; Gao, N.; Lu, X.; Li, M.; Wu, X.; Liu, Z.; Jin, Y.; Liu, J.; Xu, J.; et al. I probiotici possono ritardare la progressione della steatosi epatica analcolica ripristinando la struttura del microbiota intestinale e migliorando l'endotossiemia intestinale. Sci. Rep. 2017, 7, 45176. [CrossRef]
172.Seo, M.; Inoue, I.; Tanaka, M.; Matsuda, N.; Nakano, T.; Avata, T.; Katayama, S.; Alpers, DH; Komoda, T. Clostridium Butyricum MIYAIRI 588 migliora la malattia del fegato grasso non alcolica indotta da una dieta ricca di grassi nei ratti. Scavare. Dis. Sci. 2013, 58, 3534–3544. [CrossRef]
173. Ma, X.; Hua, J.; Li, Z. I probiotici migliorano la steatosi epatica indotta da una dieta ricca di grassi e la resistenza all'insulina aumentando le cellule NKT epatiche. J. Hepatol. 2008, 49, 821–830. [CrossRef]
174. Li, Z. Probiotici e anticorpi contro il TNF inibiscono l'attività infiammatoria e migliorano la steatosi epatica non alcolica. Epatologia 2003, 37, 343–350. [CrossRef] [PubMed]
175. Munukka, E.; Rintala, A.; Toivonen, R.; Nylund, M.; Yang, B.; Takanen, A.; Hanninen, A.; Vuopio, J.; Huovinen, P.; Jalkanen, S.; et al. Il trattamento con Faecalibacterium Prausnitzii migliora la salute epatica e riduce l'infiammazione del tessuto adiposo nei topi alimentati ad alto contenuto di grassi. ISME J. 2017, 11, 1667–1679. [CrossRef] [PubMed]
176. Ahn, Sai Baba; giugno, DW; Kang, BK; Lim, JH; Lim, S.; Chung, M.-J. Studio randomizzato, in doppio cieco, controllato con placebo di una miscela probiotica multispecie nella steatosi epatica non alcolica. Sci Rep. 2019, 9, 5688. [CrossRef] [PubMed]
177. Chen, Y.; Feng, R.; Yang, X.; Dai, J.; Huang, M.; Ji, X.; Li, Y.; Okekunle, AP; Gao, G.; Onwuka, JU; et al. Lo yogurt migliora la resistenza all'insulina e il grasso del fegato nelle donne obese con steatosi epatica non alcolica e sindrome metabolica: uno studio controllato randomizzato. Sono. J.Clin. Nutr. 2019, 109, 1611–1619. [CrossRef]
178. Sepideh, A.; Karim, P.; Hossein, A.; Leila, R.; Hamdollah, M.; Mohammad, EG; Mojtaba, S.; Mohammed, S.; Gader, G.; Seyed Moayed, A. Effetti dell'integrazione di probiotici multiceppo sugli indici glicemici e infiammatori in pazienti con steatosi epatica non alcolica: uno studio clinico randomizzato in doppio cieco. Marmellata. Coll. Nutr. 2016, 35, 500–505. [CrossRef]
179. Aller, R.; De Luis, DA; Izaola, O.; Condé, R.; González Sagrado, M.; Primo, D.; De La Fuente, B.; Gonzalez, J. Effetto di un probiotico sulle aminotransferasi epatiche nei pazienti affetti da steatosi epatica non alcolica: uno studio clinico randomizzato in doppio cieco. Euro. Rev.Med. Farm. Sci 2011, 15, 1090–1095.
180. Derosa, G.; Guasti, L.; D'Angelo, A.; Martinotti, C.; Valentino, MC; Di Matteo, S.; Bruno, GM; Maresca, AM; Gaudio, GV; Maffioli, P. Terapia probiotica con VSL#3® in pazienti con NAFLD: uno studio clinico randomizzato. Davanti. Nutr. 2022, 9, 846873. [CrossRef]
181. Shavakhi, A.; Minakari, M.; Firouzian, H.; Assali, R.; Hekmatdoost, A.; Felci, G. Effetto di un probiotico e metformina sulle aminotransferasi epatiche nella steatoepatite non alcolica: uno studio clinico randomizzato in doppio cieco. Int. J. Prec. Med. 2013, 4, 531–537.
182. Kobyliak, N.; Abenavoli, L.; Mykhalchyshyn, G.; Kononenko, L.; Boccuto, L.; Kyriienko, D.; Dynnyk, O. Un probiotico multi-ceppo riduce l'indice di fegato grasso, le citochine e i livelli di aminotransferasi nei pazienti con NAFLD: prove da uno studio clinico randomizzato. JGLD 2018, 27, 41–49. [CrossRef]
183. Mei, L.; Tang, Y.; Li, M.; Yang, P.; Liu, Z.; Yuan, J.; Zheng, P. Co-somministrazione di probiotici per abbassare il colesterolo e antrachinone da Cassia Obtusifolia, L. Migliora il fegato grasso non alcolico. PLoS ONE 2015, 10, e0138078. [CrossRef]
184. Park, E.-J.; Lee, Y.-S.; Kim, SM; Park, G.-S.; Lee, YH; Jeong, DY; Kang, J.; Lee, H.‑J. Effetti benefici dei ceppi di Lactobacillus Plantarum sulla steatosi epatica non alcolica nei ratti alimentati con dieta ad alto contenuto di grassi/alto fruttosio. Nutrienti 2020, 12, 542. [CrossRef] [PubMed]
185.Yan, Y.; Liu, C.; Zhao, S.; Wang, X.; Wang, J.; Zhang, H.; Vanga, Y.; Zhao, G. Probiotic Bifidobacterium Lactis V9 attenua la steatosi epatica e l'infiammazione nei ratti con steatosi epatica non alcolica. AMB Espr. 2020, 10, 101. [CrossRef]
186. Nabavi, S.; Raffraf, M.; Somi, MH; Homayouni-Rad, A.; Asghari-Jafarabadi, M. Effetti del consumo di yogurt probiotico sui fattori metabolici negli individui con steatosi epatica non alcolica. J. Caseificio Sci. 2014, 97, 7386–7393. [CrossRef] [PubMed]
187. Duseja, A.; Acharya, SK; Mehta, M.; Chabra, S.; Shalimar, RS; Das, A.; Dattagupta, S.; Dhman, RK; Chawla, YK Probiotico multiceppo ad alta potenza migliora l'istologia epatica nella steatosi epatica non alcolica (NAFLD): uno studio randomizzato, in doppio cieco, di prova del concetto. BMJ Gastroenterolo aperto. 2019, 6, e000315. [CrossRef] [PubMed]
188. Mamma, J.; Zhou, D.; Li, H. Microbiota intestinale e steatosi epatica non alcolica: approfondimenti sui meccanismi e sulla terapia. Nutrienti 2017, 9, 1124. [CrossRef]
189. Fianchi, F.; Liguori, A.; Gasbarrini, A.; Grieco, A.; Miele, L. Malattia del fegato grasso non alcolica (NAFLD) come modello di interazione dell'asse intestino-fegato: dalla fisiopatologia al potenziale obiettivo del trattamento per la terapia personalizzata. Int. J. Mol. Sci. 2021, 22, 6485. [CrossRef]
190. Gibson, GR; Roberfroid, MB Modulazione dietetica del microbiota del colon umano: introduzione al concetto di prebiotici. J. Nutr. 1995, 125, 1401–1412. [CrossRef]
191. Holscher, fibra alimentare HD e prebiotici e microbiota gastrointestinale. Microbi intestinali 2017, 8, 172–184. [CrossRef]
192. de Vrese, M.; Schrezenmeir, J. Probiotici, prebiotici e simbiotici. Biotecnologie alimentari 2008, 111, 1–66.
193. Camere, ES; Byrne, CS; Morrison, DJ; Murphy, chilogrammo; Preston, T.; Tedford, C.; García-Perez, I.; Fontana, S.; SerranoContreras, JI; Holmes, E.; et al. L'integrazione dietetica con estere inulina-propionato o inulina migliora la sensibilità all'insulina negli adulti con sovrappeso e obesità con effetti distinti sul microbiota intestinale, sul metaboloma plasmatico e sulle risposte infiammatorie sistemiche: uno studio incrociato randomizzato. Gut 2019, 68, 1430–1438. [CrossRef]
194. Tandon, D.; Haque, MM; Presi.; Giain, M.; Bhaduri, A.; Dubey, AK; Mande, SS Uno studio prospettico randomizzato, in doppio cieco, controllato con placebo, sulla relazione dose-risposta per indagare l'efficacia dei frutto-oligosaccaridi (FOS) sulla microflora intestinale umana. Sci. Rep. 2019, 9, 5473. [CrossRef] [PubMed]
195. Liu F.; Li, P.; Chen, M.; Luo, Y.; Prabhakar, M.; Zheng, H.; EHI.; Qi, Q.; Lungo, H.; Zhang, Y.; et al. Il fruttooligosaccaride (FOS) e il galattooligosaccaride (GOS) aumentano il bifidobatterio ma riducono i batteri produttori di butirrato con metabolismo glicemico avverso in popolazioni giovani sane. Sci. Rep. 2017, 7, 11789. [CrossRef] [PubMed]
196. Parnell, JA; Raman, M.; Rioux, KP; Reimer, RA Il ruolo potenziale della fibra prebiotica per il trattamento e la gestione della steatosi epatica non alcolica e dell'obesità associata e della resistenza all'insulina. Fegato Int. 2012, 32, 701–711. [CrossRef] [PubMed]
197. Daubioul, CA; Hormans, Y.; Lambert, P.; Danse, E.; Delzenne, NM Effetti dell'oligofruttosio sul metabolismo del glucosio e dei lipidi in pazienti con steatoepatite non alcolica: risultati di uno studio pilota. Euro. J.Clin. Nutr. 2005, 59, 723–726. [CrossRef] [PubMed]
198. Ventilatore, J.‑G. Effetto del lattulosio sulla creazione di un modello di steatoepatite non alcolica di ratto. WJG 2005, 11, 5053. [CrossRef] [PubMed]
199. Matsumoto, K.; Ichimura, M.; Tsuneyama, K.; Moritoki, Y.; Tsunashima, H.; Omagari, K.; Hara, M.; Yasuda, I.; Miyakawa, H.; Kikuchi, K. frutto-oligosaccaridi e funzione di barriera intestinale in un modello murino carente di metionina-colina di steatoepatite non alcolica. PLoS ONE 2017, 12, e0175406. [CrossRef] [PubMed]
200. Ebrahimi-Mameghani, M.; Aliashrafi, S.; Javadzadeh, Y.; AsghariJafarabadi, M. L'effetto dell'integrazione di Chlorella Vulgaris sugli enzimi epatici, sul glucosio sierico e sul profilo lipidico nei pazienti con steatosi epatica non alcolica. Promozione Salute Prospettiva. 2014. [CrossRef]
201. Javadi, L.; Gavami, M.; Khoshbaten, M.; Safayan, A.; Barzegari, A.; Pourghassem Gargari, B. L'effetto dei probiotici e/o dei prebiotici sui test di funzionalità epatica nei pazienti con steatosi epatica non alcolica: uno studio clinico randomizzato in doppio cieco. Iran. Mezzaluna Rossa. Med. J. 2017, 19. [CrossRef]
202. Vulevic, J.; Juric, A.; Walton, GE; Claus, PS; Zortzis, G.; Verso, RE; Gibson, GR Influence of Galacto-Oligosaccharide Mixture (B-GOS) on Gut Micro.biota, Immune Parameters and Metabonomics in Elderly Persons. Fr. J. Nutr. 2015, 114, 586–595. [CrossRef]
203. Vulevic, J.; Drakoularakou, A.; Yaqoob, P.; Zortzis, G.; Gibson, Modulazione GR del profilo della microflora fecale e della funzione immunitaria mediante una nuova miscela di trans-galattooligosaccaridi (B-GOS) in volontari anziani sani. Sono. J.Clin. Nutr. 2008, 88, 1438–1446. [CrossRef]
204 Walton, GE; van den Heuvel, EGHM; Kosters, MHW; Rastall, RA; Tuohy, KM; Gibson, GR Uno studio incrociato randomizzato che indaga gli effetti dei galatto-oligosaccaridi sul microbiota fecale in uomini e donne di età superiore ai 50 anni. Fr. J. Nutr. 2012, 107, 1466–1475. [CrossRef]
205. Markowiak, P.; ´Sli˙zewska, K. Effetti di probiotici, prebiotici e sinbiotici sulla salute umana. Nutrienti 2017, 9, 1021. [CrossRef] [PubMed]
206. Malaguarnera, M.; Vacante, M.; Antico, T.; Giordano, M.; Chisari, G.; Acquaviva, R.; Mastrojeni, S.; Malaguarnera, G.; Mistretta, A.; Li Volti, G.; et al. Bifidobacterium Longum con frutto-oligosaccaridi in pazienti con steatoepatite non alcolica. Scavare. Dis. Sci. 2012, 57, 545–553. [CrossRef] [PubMed]
207. Eslamparast, T.; Poustchi, H.; Zamani, F.; Sharafkhah, M.; Malekzadeh, R.; Hekmatdoost, A. Integrazione simbiotica nella steatosi epatica non alcolica: uno studio pilota randomizzato, in doppio cieco, controllato con placebo. Sono. J.Clin. Nutr. 2014, 99, 535-542. [CrossRef] [PubMed]
208. Mofidi, F.; Poustchi, H.; Yari, Z.; Nourinayyer, B.; Merat, S.; Sharafkhah, M.; Malekzadeh, R.; Hekmatdoost, A. Integrazione simbiotica in pazienti magri con steatosi epatica non alcolica: uno studio clinico pilota, randomizzato, in doppio cieco, controllato con placebo. Fr. J. Nutr. 2017, 117, 662–668. [CrossRef] [PubMed]
209.Scorletti, E.; Afolabi, PR; Miglia, EA; Smith, DE; Almehmadi, A.; Alshathry, A.; Bambini, CE; Del Fabbro, S.; Bilson, J.; Moises, HE; et al. I simbiotici alterano i microbiomi fecali, ma non il grasso del fegato o la fibrosi, in uno studio randomizzato su pazienti con steatosi epatica non alcolica. Gastroenterologia 2020, 158, 1597–1610.e7. [CrossRef]
210. Ferolla, S.; Couto, C.; Costa-Silva, L.; Armiliato, G.; Pereira, C.; Martins, F.; Ferrari, M.; Vilela, E.; Torres, H.; Cunha, A.; et al. Effetto benefico dell'integrazione simbiotica sulla steatosi epatica e sui parametri antropometrici, ma non sulla permeabilità intestinale in una popolazione con steatoepatite non alcolica. Nutrienti 2016, 8, 397. [CrossRef]
211. Asgharian, A.; Mohammed, V.; Goli, Z.; Esmaillzade, A.; Feizi, A.; Askari, G. L'effetto dell'integrazione simbiotica sulla composizione corporea e sul profilo lipidico nei pazienti con NAFLD: uno studio clinico randomizzato, in doppio cieco, controllato con placebo. Iran. Mezzaluna Rossa. Med. J. 2017, 19. [CrossRef]
212. Asgharian, A.; Askari, G.; Esmailzade, A.; Feizi, A.; Mohammadi, V. L'effetto della supplementazione simbiotica sugli enzimi epatici, sulla proteina c-reattiva e sui risultati degli ultrasuoni nei pazienti con steatosi epatica non alcolica: uno studio clinico. Int. J. Prec. Med. 2016, 7, 59. [CrossRef]
213. Bjorklund, M.; Ouwehand, AC; Forsten, SD; Nikkila, J.; Tiihonen, K.; Rautonen, N.; Lahtinen, SJ Il microbiota intestinale degli utenti anziani sani di FANS è modificato in modo selettivo con la somministrazione di Lactobacillus Acidophilus NCFM e Lactitol. ETÀ 2012, 34, 987–999. [CrossRef]
214. Macfarlane, S.; Chiaramente, S.; Bahram, B.; Reynolds, N.; Macfarlane, GT Il consumo simbiotico modifica il metabolismo e la composizione del microbiota intestinale nelle persone anziane e modifica i processi infiammatori: uno studio incrociato randomizzato, in doppio cieco, controllato con placebo. Alimento. Farm. 2013, 38, 804–816. [CrossRef]
215. Bartosch, S.; Woodmansey, EJ; Paterson, JCM; McMurdo, MET; Macfarlane, GT Effetti microbiologici del consumo di un sinbiotico contenente bifidobacterium bifidum, bifidobacterium lactis e oligofruttosio nelle persone anziane, determinato dalla reazione a catena della polimerasi in tempo reale e dal conteggio dei batteri vitali. Clino. Infettare. Dis. 2005, 40, 28–37. [CrossRef] [PubMed]
216. Juárez-Fernández, M.; Porras, D.; Petrov, P.; Roman-Sagüillo, S.; Garcia-Mediavilla, MV; Soluyanova, P.; Martínez-Flórez, S.; Gonzalez-Gallego, J.; Nistal, E.; Jover, R.; et al. La combinazione sinbiotica di Akkermansia muciniphila e quercetina migliora l'obesità precoce e la NAFLD attraverso il rimodellamento del microbiota intestinale e la modulazione del metabolismo degli acidi biliari. Antiossidanti 2021, 10, 2001. [CrossRef]
217.Kim, KO; Gluck, M. Trapianto di microbiota fecale: un aggiornamento sulla pratica clinica. Clino. Endosc. 2019, 52, 137–143. [CrossRef] [PubMed]
218. Cammarota, G.; Ianiro, G.; Gasbarrini, A. Il trapianto di microbiota fecale nella pratica clinica. Gut 2018, 67, 196,2–197. [CrossRef]
219. Zhou, D.; Pan, Q.; Shen, F.; Cao, H.; Ding, W.; Chen, Y.; Fan, J. Il trapianto di microbiota fecale totale allevia la steatoepatite indotta da una dieta ricca di grassi nei topi attraverso la regolazione benefica del microbiota intestinale. Sci. Rep. 7, 2017, 1529. [CrossRef]
220. Garcia-Lezana, T.; Raurell, I.; Bravo, M.; Torres-Arauz, M.; Salcedo, MT; Santiago, A.; Schönenberger, A.; Manichanh, C.; Genesca, J.; Martell, M.; et al. Il ripristino di un microbiota intestinale sano normalizza l'ipertensione portale in un modello di ratto di steatoepatite non alcolica: insufficienza epatica/cirrosi/ipertensione portale. Epatologia 2018, 67, 1485–1498. [CrossRef]
221. Witjes, JJ; Smits, LP; Pekmez, CT; Prodan, A.; Meijnikmann, AS; Troëlstra, MA; Butter, KEC; Herrema, H.; Levin, E.; Holleboom AG; et al. Il trapianto di microbiota fecale da donatore altera il microbiota intestinale e i metaboliti negli individui obesi con steatoepatite. Hepatol. Comune. 2020, 4, 1578–1590. [CrossRef] [PubMed]
222. Craven, L.; Rahman, A.; Nair Parvathy, S.; Beaton, M.; Silverman, J.; Qumosani, K.; Hramiak, I.; Hegele, R.; Gioia, T.; Meddings, J.; et al. Il trapianto allogenico di microbiota fecale in pazienti con steatosi epatica non alcolica migliora la permeabilità anormale dell'intestino tenue: uno studio di controllo randomizzato. Sono. J. Gastroenterolo. 2020, 115, 1055–1065. [CrossRef]







