Polifenoli dietetici antietà e potenziali meccanismi Parte 3

Aug 01, 2023

Riferimento cont.

Il glicoside di cistanche può anche aumentare l'attività della SOD nei tessuti del cuore e del fegato e ridurre significativamente il contenuto di lipofuscina e MDA in ciascun tessuto, eliminando efficacemente vari radicali reattivi dell'ossigeno (OH-, H₂O₂, ecc.) e proteggendo dai danni al DNA causati da radicali OH. I glicosidi feniletanoidi di Cistanche hanno una forte capacità di scavenging dei radicali liberi, una maggiore capacità riducente rispetto alla vitamina C, migliorano l'attività della SOD nella sospensione dello sperma, riducono il contenuto di MDA e hanno un certo effetto protettivo sulla funzione della membrana dello sperma. I polisaccaridi Cistanche possono migliorare l'attività di SOD e GSH-Px negli eritrociti e nei tessuti polmonari di topi sperimentalmente senescenti causati dal D-galattosio, nonché ridurre il contenuto di MDA e collagene nei polmoni e nel plasma e aumentare il contenuto di elastina, hanno un buon effetto scavenging su DPPH, prolunga il tempo di ipossia nei topi senescenti, migliora l'attività della SOD nel siero e ritarda la degenerazione fisiologica del polmone nei topi senescenti sperimentalmente Con la degenerazione morfologica cellulare, gli esperimenti hanno dimostrato che Cistanche ha la buona capacità antiossidante e ha il potenziale per essere un farmaco per prevenire e curare le malattie dell'invecchiamento cutaneo. Allo stesso tempo, l'echinacoside in Cistanche ha una significativa capacità di eliminare i radicali liberi DPPH e ha la capacità di eliminare le specie reattive dell'ossigeno e prevenire la degradazione del collagene indotta dai radicali liberi, e ha anche un buon effetto di riparazione sul danno dell'anione dei radicali liberi della timina.

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27. Bayard, V.; Chamorro, F.; Motta, J.; Hollenberg, Nk L'assunzione di flavanolo influenza la mortalità da processi dipendenti dall'ossido nitrico? Cardiopatia ischemica, ictus, diabete mellito e cancro a Panama. Int. J.Med. Sci. 2007, 4, 53–58. [CrossRef] [PubMed]

28.Hollenberg, NK; Martínez, G.; McCullough, M.; Meinking, T.; Passan, D.; Preston, M.; Rivera, A.; Taplin, D.; Vicaria-Clement, M. Invecchiamento, acculturazione, assunzione di sale e ipertensione nella Kuna di Panama. Ipertensione 1997, 29, 171–176. [CrossRef]

29.Hollenberg, NK; Naomi, F. È scuro nel cioccolato fondente? Circolazione 2007, 116, 2360–2362. [CrossRef]

30. Kirschbaum, J. Effetto sulla longevità umana del cioccolato dietetico aggiunto. Nutrizione 1998, 14, 869. [CrossRef]

31. Holt, RR; Lazzaro, SA; Sullard, MC; Zhu, QY; Schramm, DD; Pietra del Martello, JF; Fraga, CG; Schmitz, HH; Keen, CL Procyanidin dimer B2 [epicatechina-(4beta-8)-epicatechina] nel plasma umano dopo il consumo di cacao ricco di flavanoli. Sono. J.Clin. Nutr. 2002, 76, 798–804. [CrossRef]

32. Martinez-González, MA; Martin-Calvo, N. Dieta mediterranea e aspettativa di vita; oltre l'olio d'oliva, la frutta e la verdura. Corr. Opin. Clino. Nutr. Metab. Cura 2016, 19, 401–407. [CrossRef]

33. Menotti, A.; Pudu, PE; Maiano, G.; Catasta, G. Cardiovascular e altre cause di morte in funzione delle abitudini di vita in una popolazione maschile di mezza età quasi estinta. Uno studio di follow-up di 50-anni. Int. J. Cardiol 2016, 210, 173–178. [CrossRef]

34.Bellavia, A.; Tektonidis, TG; Orsini, N.; Wolk, A.; Larsson, SC Quantificazione dei benefici della dieta mediterranea in termini di sopravvivenza. Euro. J. Epidemial. 2016, 31, 527–530. [CrossRef] [PubMed]

35. Harmon, BE; Boushey, CJ; Shvetsov, YB; Ettienne, R.; Reedy, J.; Wilkens, LR; Le Marchand, L.; Henderson, BE; Kolonel, LN Associazioni dei principali indici di qualità della dieta con la mortalità nella coorte multietnica: il progetto sui metodi dei modelli dietetici. Sono. J.Clin. Nutr. 2015, 101, 587–597. [CrossRef] [PubMed]

36. Leri, M.; Scuto, M.; Ontario, ML; Calabrese, V.; Calabrese, EJ; Bucciantini, M.; Stefani, M. Effetti salutari dei polifenoli vegetali: meccanismi molecolari. Int. J. Mol. Sci. 2020, 21, 1250. [CrossRef] [PubMed]

37. Ahmad, J.; Toufeeq, I.; Khan, Massachusetts; Ameen, MSM; Risposta, ET; Utirapatia, S.; Mir, RS; Ahmad, J. Oleuropein: Una molecola antiossidante naturale nel trattamento della sindrome metabolica. Fitotre. Ris. 2019, 33, 3112–3128. [CrossRef]

38. Pitozzi, V.; Jacomelli, M.; Catelan, D.; Servili, M.; Taticchi, A.; Biggeri, A.; Dolara, P.; Giovannelli, L. L'olio extravergine di oliva dietetico a lungo termine ricco di polifenoli inverte le disfunzioni legate all'età nella coordinazione motoria e nella memoria contestuale nei topi: ruolo dello stress ossidativo. Ringiovanimento Ris. 2012, 15, 601–612. [CrossRef] [PubMed]

39. Bayram B.; Ozcelik, B.; Grimm, S.; Roeder, T.; Schrader, C.; Ernesto IM; Wagner, AA; Grune, T.; Franco, J.; Rimbach, G. Una dieta ricca di fenoli dell'olio d'oliva riduce lo stress ossidativo nel cuore dei topi SAMP8 mediante l'induzione dell'espressione genica dipendente da Nrf2-. Ringiovanimento Ris. 2012, 15, 71–81. [CrossRef]

40. Lauretti, E.; Giuliano, L.; Pratico, D. L'olio extra vergine di oliva migliora la cognizione e la neuropatologia dei topi 3xTg: ruolo dell'autofagia. Anna. Clino. Trad. Neurolo. 2017, 4, 564–574. [CrossRef]

41. De La Cruz, JP; Del Río, S.; Arrebola, MM; Lopez-Villodres, JA; Jebrouni, N.; Gonzalez-Correa, JA Effect of virgin olive oil plus acetylsalicilic acid on brain slices damage after hypoxia-reoxygenation in ratti con tipo 1-like diabete mellito. Neurosci. Lett. 2010, 471, 89–93. [CrossRef]

42. Giovannelli, L. Effetti benefici dei fenoli dell'olio d'oliva sul processo di invecchiamento: prove sperimentali e possibili meccanismi di azione. Nutr. Invecchiamento 2012, 1, 207–223. [CrossRef]

43. Serreli, G.; Deiana, M. Polifenoli dell'olio extra vergine di oliva: modulazione delle vie cellulari correlate alle specie ossidanti e all'infiammazione nell'invecchiamento. Celle 2020, 9, 478. [CrossRef]

44. Dilberger, B.; Passone, M.; Asseburg, H.; Silaidos, CV; Schmitt, F.; Schmiedl, T.; Schiber, A.; Eckert, GP Polifenoli e metaboliti migliorano la sopravvivenza nei roditori e nei nematodi: impatto dei mitocondri. Nutrienti 2019, 11, 1886. [CrossRef]

45. Autorità, Parere scientifico EFS sulla fondatezza delle indicazioni sulla salute relative ai polifenoli nell'oliva e protezione. EFSA J. 2011, 9, 2033.

46. ​​Sassonia, S.; Caroni, P. Vulnerabilità neuronale selettiva nelle malattie neurodegenerative: dalle soglie dei fattori di stress alla degenerazione. Neurone 2011, 71, 35–48. [CrossRef]

47.Kennedy, BK; Berger, S.L.; Brunet, A.; Campisi, J.; Cuervo, AM; Epel, ES; Franceschi, C.; Lithgow, GJ; Morimoto, RI; Pessin, JE; et al. Geroscienza: collegare l'invecchiamento alle malattie croniche. Cella 2014, 159, 709–713. [CrossRef] [PubMed]

48. Wang, JC; Bennett, M. Invecchiamento e aterosclerosi: meccanismi, conseguenze funzionali e potenziali terapie per la senescenza cellulare. Circ. Ris. 2012, 111, 245–259. [CrossRef] [PubMed]

49. Barnham, KJ; Maestri, CL; Bush, AI Malattie neurodegenerative e stress ossidativo. Nat. Rev. Drug Discov. 2004, 3, 205-214. [CrossRef]

50. Singh, A.; Kukreti, R.; Sasso, L.; Kukreti, S. Stress ossidativo: un modulatore chiave nelle malattie neurodegenerative. Molecole 2019, 24, 1583. [CrossRef]

51. Bordoni, L.; Gabbianelli, R. DNA mitocondriale e neurodegenerazione: qualsiasi ruolo per gli antiossidanti dietetici? Antiossidanti 2020, 9, 764. [CrossRef]

52. Scalberto, A.; Manach, C.; Morand, C.; Remesy, C.; Jimenez, L. Polifenoli dietetici e prevenzione delle malattie. Critico. Rev. Cibo Sci. Nutr. 2005, 45, 287–306. [CrossRef] [PubMed]

53. Bhullar, KS; Rupasinghe, Polifenoli HP: agenti terapeutici multipotenti nelle malattie neurodegenerative. Ossidativo Med. Cellula. Longev. 2013, 2013, 891748. [CrossRef]

54. Farzaei, MH; Tewari, D.; Momtaz, S.; Argüelles, S.; Nabavi, SM Targeting della via di segnalazione ERK da parte dei polifenoli come nuova strategia terapeutica per la neurodegenerazione. Chimica alimentare. tossico. Int. J. Publ. Fr. Ind. Biol. Ris. Assoc. 2018, 120, 183–195. [CrossRef] [PubMed]

55. Farzaei, MH; Bahramsoltani, R.; Abbasabadi, Z.; Braidy, N.; Nabavi, SM Ruolo delle catechine del tè verde nella prevenzione del declino cognitivo legato all'età: obiettivi farmacologici e prospettiva clinica. J.Cell. Fisiolo. 2019, 234, 2447–2459. [CrossRef] [PubMed]

56. Arbo, BD; Andrè-Miral, C.; Nasre-Nasser, RG; Schimith, LE; Santos, MG; Costa-Silva, D.; Muccillo-Baisch, AL; Hort, MA Derivati ​​del resveratrolo come potenziali trattamenti per il morbo di Alzheimer e il morbo di Parkinson. Davanti. Neuroscienze dell'invecchiamento. 2020, 12, 103. [CrossRef]

57.Giuliano, C.; Cerri, S.; Blandini, F. Potenziali effetti terapeutici dei polifenoli nella malattia di Parkinson: studi preclinici in vivo e in vitro. Rigenerazione neurale. Ris. 2021, 16, 234–241. [CrossRef] [PubMed]

58.Malare, DS; Prasanth, Michigan; Brimson, JM; Sharika, R.; Sivamaruthi, BS; Chaiyasut, C.; Tencomnao, T. Proprietà neuroprotettive del tè verde (Camellia sinensis) nella malattia di Parkinson: una rassegna. Molecole 2020, 25, 3926. [CrossRef]

59. Elejalde, E.; Villaran, MC; Alonso, supplementazione di polifenoli dell'uva RM per lo stress ossidativo indotto dall'esercizio. J.Int. soc. Nutrizione sportiva 2021, 18, 3. [CrossRef]

60. Tichonova, MA; Tichonova, NG; Tendetnik, MV; Ovsyukova, MV; Akopyan, AA; Dubrovina, NI; Amstislavskaja, TG; Khlestkina, EK Effetti dei polifenoli dell'uva sulla durata della vita e alterazioni neuroinfiammatorie correlate a disturbi neurodegenerativi simili alla malattia di Parkinson nei topi. Molecole 2020, 25, 5339. [CrossRef]

61.Sharma, D.; Seti, P.; Hussein, E.; Singh, R. La curcumina contrasta le alterazioni legate all'invecchiamento indotte dall'alluminio nello stress ossidativo, Na più, K più ATPasi e proteina chinasi C nelle regioni del cervello di ratto adulto e vecchio. Biogerontologia 2009, 10, 489–502. [CrossRef]

62. Bitu Pinto, N.; da Silva Alexandre, B.; Neves, KR; Silva, Ah; Leale, LK; Viana, GS Proprietà neuroprotettive dell'estratto standardizzato di Camellia sinensis (tè verde) e dei suoi principali componenti bioattivi, epicatechina ed epigallocatechina gallato, nel 6-modello OHDA del morbo di Parkinson. Evidente. Alternativa complementare basata. Med. eCAM 2015, 2015, 161092. [CrossRef] [PubMed]

63. Iwata, K.; Wu, D.; Ferdousi, F.; Sasaki, K.; Tominaga, K.; Uchida, H.; Arai, Y.; Szele, FG; Isoda, H. Sugarcane (Saccharum officinarum L.) Top Extract migliora il declino cognitivo nei topi modello SAMP8 di senescenza: modulazione dello sviluppo neurale e del metabolismo energetico. Davanti. Cell Dev. Biol. 2020, 8, 573487. [CrossRef] [PubMed]

64. Sasaki, K.; Davis, J.; Doldàn, NG; Arao, S.; Ferdousi, F.; Szele, FG; Isoda, H. 3,4,5-L'acido tricaffeoilchinico induce la neurogenesi nell'adulto e migliora il deficit di apprendimento e memoria nei topi 8 inclini alla senescenza modello di invecchiamento. Invecchiamento 2019, 11, 401–422. [CrossRef]

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65. Liang, Z.; Zhang, B.; Su, WW; Williams, PG; Li, QX C-glicosilflavoni alleviano la fosforilazione tau e la neurotossicità dell'amiloide attraverso l'inibizione di GSK3. ACS Chim. Neurosci. 2016, 7, 912–923. [CrossRef] [PubMed]

66.Dludla, PV; Joubert, E.; Muller, CJF; Lou, J.; Johnson, R. Stress ossidativo indotto dall'iperglicemia e effetti cardioprotettivi delle malattie cardiache dei flavonoidi rooibos e dell'acido fenilpiruvico -2- O-beta-D-glucoside. Nutr. Metab. 2017, 14, 45. [CrossRef]

67. Ziqubu, K.; Dudla, PV; Joubert, E.; Muller, CJF; Lou, J.; Tiano, L.; Nkambule, BB; Kappo, AP; Mazibuko-Mbeje, SE Isoorientin: un flavone alimentare con il potenziale per migliorare diverse complicazioni metaboliche. Pharmacol. Ris. 2020, 158, 104867. [CrossRef]

68. Gesù, CCM; Araújo, MH; Simão, T.; Lasunskaya, EB; Bart, T.; Muzitano, MF; Pinto, SC Prodotti naturali della poligamia Vitex e la loro attività antimicobatterica e antinfiammatoria. Nat. prod. Ris. 2020, 1–5. [CrossRef]

69. Ma, L.; Zhang, B.; Liu, J.; Qiao, C.; Liu, Y.; Li, S.; Lv, H. Isoorientin esercita un effetto protettivo contro la neurotossicità indotta da 6-OHDA attivando la via di segnalazione AMPK/AKT/Nrf2. Funzione alimentare 2020, 11, 10774–10785. [CrossRef]

70.Grewal, R.; Reutzel, M.; Dilberger, B.; Hein H.; Zotzel, J.; Marx, S.; Trezel, J.; Sarafeddinov, A.; Fuchs, C.; Eckert, GP L'oleocantale purificato e il ligstroside proteggono dalla disfunzione mitocondriale nei modelli di malattia di Alzheimer precoce e invecchiamento cerebrale. Esp. Neurolo. 2020, 328, 113248. [CrossRef]

71. Schaffer, S.; Müller, NOI; Eckert, GP Effetti citoprotettivi dell'estratto di acque reflue del frantoio e del suo principale costituente idrossitirosolo nelle cellule PC12. Pharmacol. Ris. 2010, 62, 322–327. [CrossRef]

72. Schaffer, S.; Podstawa, M.; Visioli, F.; Bogani, P.; Müller, NOI; Eckert, GP L'estratto di acque reflue del frantoio ricco di idrossitirosolo protegge le cellule cerebrali in vitro ed ex vivo. J. Agric. Chimica alimentare. 2007, 55, 5043–5049. [CrossRef] [PubMed]

73. Ötzkan, S.; Muller, NOI; Legno, WG; Eckert, GP Effetti del 7, 8-diidrossiflavone sui livelli di isoprenoidi lipidici e proteine ​​Rho nel cervello di topi C57BL/6 invecchiati. NeuroMol. Med. 2020, 1–10. [CrossRef]

74. Fitzenberger, E.; Deusing, DJ; Marx, C.; Bollo, M.; Luersen, K.; Wenzel, U. Il polifenolo quercetina protegge il mutante mev -1 di Caenorhabditis elegans dalla riduzione della sopravvivenza indotta dal glucosio sotto stress da calore a seconda di SIR -2.1, DAF -12 e proteasoma attività. Mol. Nutr. ricerca alimentare 2014, 58, 984–994. [CrossRef]

75. Philel, CJ; Wilson, CA; Lee, VMI; Klein, PS GSK-3 regola la produzione di peptidi amiloidi della malattia di Alzheimer. Natura 2003, 423, 435–439. [CrossRef]

76. Kolarova, M.; García-Sierra, F.; Bartos, A.; Ricny, J.; Ripova, D. Struttura e patologia della proteina tau nella malattia di Alzheimer. Int. J. Malattia di Alzheimer Dis. 2012, 2012, 731526. [CrossRef]

77.Qin, XY; Cheng, Y.; Yu, LC Potenziale protezione dei polifenoli del tè verde contro la tossicità indotta dalla beta-amiloide intracellulare sui neuroni corticali prefrontali primari coltivati ​​di ratti. Neurosci. Lett. 2012, 513, 170–173. [CrossRef]

78. Czachor, J.; Milek, M.; Galiniak, S.; St˛epie´n, K.; D˙zugan, M.; Moło ´n, M. Coffee estende la durata della vita cronologica del lievito grazie alle proprietà antiossidanti. Int. J. Mol. Sci. 2020, 21, 9510. [CrossRef]

79. Cho, B.-H.; Choi, S.-M.; Kim, J.-T.; Kim, BC Associazione del consumo di caffè e dei sintomi non motori nella malattia di Parkinson allo stadio iniziale naïve ai farmaci. Parkinsonismo Relat. Disordine. 2018, 50, 42–47. [CrossRef]

80. Socała, K.; Zopa, A.; Serefko, A.; Polezak, E.; Wla ´z, P. Effetti neuroprotettivi dei composti bioattivi del caffè: una revisione. Int. J. Mol. Sci. 2021, 22, 107. [CrossRef]

81.Gao, L.; Li, X.; Meng, S.; Mamma, T.; pallido, L.; Xu, S. L'acido clorogenico allevia l'autofagia e il deterioramento cognitivo indotti da A (25-35) tramite la via di segnalazione mTOR/TFEB. Droga Des. Dev. Là. 2020, 14, 1705–1716. [CrossRef] [PubMed]

82. Wang J.; Ferruzzi, MG; Ho, L.; Blount, J.; Janle, EM; Gong, B.; Pan, Y.; Gowda, GA; Raftery, D.; Arrieta Cruz, I.; et al. Metaboliti della proantocianidina mirati al cervello per il trattamento della malattia di Alzheimer. J. Neurosci. 2012, 32, 5144–5150. [CrossRef]

83.Sutherland, BA; Rahman, RM; Appleton, I. Meccanismi di azione delle catechine del tè verde, con particolare attenzione alla neurodegenerazione indotta dall'ischemia. J. Nutr. Biochimica. 2006, 17, 291–306. [CrossRef] [PubMed]

84. Gadkari, PV; Balaraman, M. Catechins: Fonti, estrazione e incapsulamento: una recensione. Bioprod. alimentare Processi. 2015, 93, 122-138. [CrossRef]

85. Li, Q.; Zhao, HF; Zhang, ZF; Liu, ZG; Pei, XR; Wang, JB; Li, Y. La somministrazione a lungo termine della catechina del tè verde previene l'apprendimento spaziale e il deterioramento della memoria nei topi -8 inclini al topo con accelerazione della senescenza diminuendo gli oligomeri Abeta 1-42 e sovraregolando le proteine ​​​​correlate alla plasticità sinaptica nell'ippocampo. Neuroscienze 2009, 163, 741–749. [CrossRef]

86. Pallauf, K.; Rimbach, G.; Rupp, PM; Mento, D.; Wolf, IM resveratrolo e durata della vita negli organismi modello. Corr. Med. Chim. 2016, 23, 4639–4680. [CrossRef]

87. Du, LL; Xie, JZ; Cheng, XS; Li, XH; Kong, FL; Jiang, X.; Ma, ZW; Wang, JZ; Chen, C.; Zhou, XW L'attivazione della sirtuina 1 attenua l'iperfosforilazione tau indotta da streptozotocina ventricolare cerebrale e le lesioni cognitive nell'ippocampo di ratto. Età 2014, 36, 613–623. [CrossRef] [PubMed]

88. Franceschi, C.; Capri, M.; Monti, D.; Giunta, S.; Olivieri, F.; Sevini, F.; Panourgia, deputato; Invidia, L.; Celani, L.; Scurti, M.; et al. Infiammazione e anti-infiammazione: dagli studi sull'uomo è emersa una prospettiva sistemica sull'invecchiamento e la longevità. Mecc. Invecchiamento Dev. 2007, 128, 92–105. [CrossRef] [PubMed]

89. Mussa, C.; Hebron, M.; Huang, X.; Ah, J.; Rissmann, RA; Aisen, PS; Turner, RS Il resveratrolo regola la neuroinfiammazione e induce l'immunità adattativa nella malattia di Alzheimer. J. Neuroinflamm. 2017, 14, 1. [CrossRef] [PubMed]

90. Clavio, PE; Frauwirth, KA Anergic CD8 più linfociti T hanno alterato l'attivazione di NF-κB con difetti nella fosforilazione e acetilazione di p65. J. Immunol. 2012, 188, 1213–1221. [CrossRef]

91. Niu, Y.; Na, L.; Feng, R.; Gong, L.; Zhao, Y.; Li, Q.; Li, Y.; Sun, C. Il fitochimico, EGCG, prolunga la durata della vita riducendo i danni alla funzionalità epatica e renale e migliorando l'infiammazione associata all'età e lo stress ossidativo nei ratti sani. Cellula di invecchiamento 2013, 12, 1041–1049. [CrossRef] [PubMed]

92. Kuptniratsaikul, V.; Thanakhumtorn, S.; Chinswangwatanakul, P.; Wattanamongkonsil, L.; Thamlikitkul, V. Efficacia e sicurezza degli estratti di Curcuma domestica in pazienti con artrosi del ginocchio. J. Altern. Complementare Med. 2009, 15, 891–897. [CrossRef]

93. De Araújo, FF; de Paulo Farias, D.; Neri-Numa, IA; Pastore, Polifenoli GM e loro applicazioni: un approccio alla chimica degli alimenti e potenzialità di innovazione. Chimica alimentare. 2020, 338, 127535. [CrossRef]

94.Heinz SA; Henson, DA; Austin, MD; Jin, F.; Nieman, supplementazione di quercetina DC e infezione del tratto respiratorio superiore: uno studio clinico di comunità randomizzato. Pharmacol. Ris. 2010, 62, 237-242. [CrossRef]

95. Yuan, L.; Han, X.; Li, W.; Ren, D.; Yang, X. Isoorientin previene l'iperlipidemia e il danno epatico regolando il metabolismo lipidico, la capacità antiossidante e il rilascio infiammatorio di citochine nei topi alimentati ad alto contenuto di fruttosio. J. Agric. Chimica alimentare. 2016, 64, 2682–2689. [CrossRef]

96. Zhang, L.; Wang, X.; Zhang, L.; Vergine, C.; Si, H. La combinazione di curcumina e luteolina inibisce sinergicamente l'infiammazione vascolare indotta da TNF-alfa nelle cellule vascolari umane e nei topi. J. Nutr. Biochimica. 2019, 73, 108222. [CrossRef] [PubMed]

97. Harman, D. L'orologio biologico: i mitocondri? Marmellata. Geriatr. soc. 1972, 20, 145-147. [CrossRef] [PubMed]

98. Linnane, AW; Marzuki, S.; Ozawa, T.; Tanaka, M. Mutazioni del DNA mitocondriale come un importante contributo all'invecchiamento e alle malattie degenerative. Lancetta 1989, 1, 642–645. [CrossRef]

99. Nenadis, N.; Wang, LF; Tsimidou, M.; Zhang, HY Stima dell'attività di scavenging dei composti fenolici utilizzando il test ABTS(*plus). J. Agric. Chimica alimentare. 2004, 52, 4669-4674. [CrossRef]

100. Lu, M.; Cai, YJ; Zanna, JG; Zhou, YL; Liu, ZL; Wu, LM Efficienza e relazione struttura-attività dell'azione antiossidante del resveratrolo e dei suoi analoghi. Pharmazie 2002, 57, 474–478. [PubMed]

101. Yokozawa, T.; Chen, CP; Dong, E.; Tanaka, T.; Nonaka, GI; Nishioka, I. Studio sull'effetto inibitorio di tannini e flavonoidi contro il radicale 1,1-difenil-2 picrylhydrazyl. Biochimica. Pharmacol. 1998, 56, 213–222. [CrossRef]

102. Cao, G.; Sofico, E.; Prior, RL Comportamento antiossidante e proossidante dei flavonoidi: relazioni struttura-attività. Radicale libero. Biol. Med. 1997, 22, 749–760. [CrossRef]

103. Wolfe, KL; Liu, RH Relazioni struttura-attività dei flavonoidi nel test dell'attività antiossidante cellulare. J. Agric. Chimica alimentare. 2008, 56, 8404–8411. [CrossRef] [PubMed]

104. Modak, B.; Contreras, ML; González-Nilo, F.; Torres, R. Relazioni di attività struttura-antiossidante dei flavonoidi isolati dall'essudato resinoso di Heliotropium sinuatum. Bioorg Med. Chim. Lett. 2005, 15, 309–312. [CrossRef] [PubMed]

105. Kato, A.; Nasu, N.; Takebayashi, K.; Adachi, I.; Minami, Y.; Sanae, F.; Asano, N.; Watson, AA; Nash, RJ Relazioni struttura-attività dei flavonoidi come potenziali inibitori della glicogeno fosforilasi. J. Agric. Chimica alimentare. 2008, 56, 4469–4473. [CrossRef]

106. Lin, Repubblica Ceca; Zhu, CC; Hu, M.; Wu, AZ; Bairu, ZD; Kangsa, SQ Relazioni struttura-attività dell'attività antiossidante in vitro sui flavonoidi isolati dal piretro tatsienense. J. Interculto. Etnofarmaco. 2014, 3, 123–127. [CrossRef] [PubMed]

107. Asseburg H.; Schäfer, C.; Muller, M.; Hagl, S.; Pohland, M.; Berressem, D.; Borchiellini, M.; Plancia, C.; Eckert, GP Effetti dell'estratto di buccia d'uva sulla disfunzione mitocondriale legata all'età, sulla memoria e sulla durata della vita nei topi C57BL/6J. Neuromol. Med. 2016, 18, 378–395. [CrossRef]

108. Singh S.; DasRoy, L.; Giri, S. Curcumin protegge il metronidazolo e la citotossicità indotta dai raggi X e lo stress ossidativo nelle cellule germinali maschili nei topi. Praga Med. Rep. 2015, 114, 92–102. [CrossRef]

109. Roy, S.; Sannigrahi, S.; Vaddepalli, RP; Gosh, B.; Pusp, P. Una nuova combinazione di metotrexato ed epigallocatechina attenua la sovraespressione delle citochine pro-infiammatorie della cartilagine e modula lo stato antiossidante nei ratti artritici adiuvanti. Infiammazione 2015, 35, 1435–1447. [CrossRef]

110. Uygur, R.; Yagmurca, M.; Alkoc, OA; Genc, ​​A.; Songur, A.; Ukok, K.; Ozen, OA Effetti della quercetina e degli acidi grassi n-3 del pesce sulla lesione testicolare indotta dall'etanolo nei ratti. Andrologia 2013. [CrossRef]

111.Yang, Y.; Wu, ZZ; Cheng, YL; Lin, W.; Qu, C. Il resveratrolo protegge dal danno ossidativo delle cellule dell'epitelio del pigmento retinico modulando l'attività SOD/MDA e attivando l'espressione di Bcl-2. Euro. Rev.Med. Pharmacol Sci. 2019, 23, 378–388. [CrossRef] [PubMed]

112. Zheng, Y.; Liu, Y.; Ge, J.; Wang, X.; Liu, L.; Bu, Z.; Liu, P. Il resveratrolo protegge le cellule epiteliali del cristallino umano dallo stress ossidativo indotto da H2O2 - aumentando l'espressione di catalasi, SOD-1 e HO-1. Mol. Vis. 2010, 16, 1467–1474.

113. Yang, XH; Li, L.; Xue, YB; Zhou, XX; Tang, JH Flavonoidi da Epimedium pubescent: Estrazione e meccanismo, capacità antiossidante ed effetti su CAT e GSH-Px di Drosophila melanogaster. Peer J. 2020, 8, e8361. [CrossRef] [PubMed]

114. Sole, S.; Zhao, X.; Zhao, L. [Effetti della genisteina su NOS, attività GSH-Px e contenuto di NO, GSH, MDA nelle cellule di carcinoma mammario umano MCF]. Wei Sheng Yan Jiu 2004, 33, 468–469. [PubMed]

115. Lorendeau, D.; Duri, L.; Genoux-Bastide, E.; Lecerf-Schmidt, F.; Simoes-Pires, C.; Carrupt, Pennsylvania; Terreux, R.; Magnard, S.; Di Pietro, A.; Boumendjel, A.; et al. Sensibilità collaterale di cellule che sovraesprimono MRP1- resistenti ai flavonoidi e ai derivati ​​attraverso l'efflusso di GSH. Biochimica. Pharmacol. 2014, 90, 235–245. [CrossRef]

116. Kobayashi, M.; Yamamoto, M. Meccanismi molecolari che attivano la via Nrf2-Keap1 della regolazione del gene antiossidante. Antiossidante. Segnale redox. 2005, 7, 385–394. [CrossRef] [PubMed]

117 Wu, CC; Hsu, MC; Hsieh, CW; Lin, JB; Lai, PH; Wung, BS Sovraregolazione dell'eme ossigenasi-1 da parte dell'epigallocatechina-3-gallato attraverso le vie fosfatidilinositolo 3-chinasi/Akt e ERK. Scienze della vita. 2006, 78, 2889–2897. [CrossRef]

118. Wruck, CJ; Claussen, M.; Führmann, G.; Romer, L.; Schultz, A.; Pufe, T.; Waetzig, V.; Peipp, M.; Herdegen, T.; Gotz, ME La luteolina protegge le cellule PC12 e C6 di ratto dall'MPP più la tossicità indotta tramite un percorso Keap1-Nrf2-dipendente da ERK. J. Transm neurale. Suppl. 2007. [CrossRef]

cistanche nedir

119.Rushworth, SA; Ogborne, RM; Charalambos, CA; O'Connell, MA Ruolo della proteina chinasi C delta nell'espressione genica mediata dall'elemento di risposta antiossidante indotta dalla curcumina nei monociti umani. Biochimica. Biofisica. Ris. Comune. 2006, 341, 1007–1016. [CrossRef] [PubMed]

120. Scià, ZA; Li, RC; Ahmed, AS; Kensler, TW; Yamamoto, M.; Biwal, S.; Dore, S. Il flavanolo (-) -epicatechina previene i danni da ictus attraverso il percorso Nrf2/HO1. J. Cereb Blood Flow Metab 2010, 30, 1951–1961. [CrossRef]

121. Hsieh, TC; Lu, X.; Wang, Z.; Wu, JM L'induzione della chinone reduttasi NQO1 da parte del resveratrolo nelle cellule K562 umane coinvolge l'elemento di risposta antiossidante ARE ed è accompagnata dalla traslocazione nucleare del fattore di trascrizione Nrf2. Med. Chim. 2006, 2, 275–285. [CrossRef] [PubMed]

122. Kim, JY; Parco, YK; Lee, KP; Lee, SM; Kang, TW; Kim, HJ; Dho, SH; Kim, SI; Kwon, KS Profilazione dell'intero genoma della rete di regolazione microRNA-mRNA nel muscolo scheletrico con l'invecchiamento. Invecchiamento 2014, 6, 524–544. [CrossRef]

123. Milenkovic, D.; Deval, C.; Gouranton, E.; Landrier, JF; Scalberto, A.; Morand, C.; Mazur, A. Modulazione dell'espressione del miRNA da parte dei polifenoli dietetici nei topi carenti di apoE: un nuovo meccanismo dell'azione dei polifenoli. PLoS ONE 2012, 7, e29837. [CrossRef]

124. Gandhy, USA; Kim, K.; Larsen, L.; Rosengren, RJ; Safe, S. Curcumin e analoghi sintetici inducono specie reattive dell'ossigeno e riducono i fattori di trascrizione della proteina di specificità (Sp) prendendo di mira i microRNA. BMC Cancro 2012, 12, 564. [CrossRef] [PubMed]

125. Boesch-Saadatmandi, C.; Wagner, AA; Wolffram, S.; Rimbach, G. Effetto della quercetina sull'espressione genica infiammatoria nel fegato di topi in vivo: ruolo del fattore redox 1, miRNA -122 e miRNA -125 b. Pharmacol. Ris. 2012, 65, 523–530. [CrossRef] [PubMed]

126. Angkeow, P.; Deshpande, SS; Qi, B.; Liu, YX; Parco, YC; Jeon, Bosnia-Erzegovina; Ozaki, M.; Irani, K. Redox factor-1: Un ruolo extra-nucleare nella regolazione dello stress ossidativo endoteliale e dell'apoptosi. La morte cellulare è diversa. 2002, 9, 717–725. [CrossRef]

127. Barzégar, A.; Moosavi-Movahedi, AA Efficienza di protezione ROS intracellulare e attività di scavenging dei radicali liberi della curcumina. PLoS ONE 2011, 6, e26012. [CrossRef] [PubMed]

128. Milenkovic, D.; Giuda, B.; Morand, C. miRNA come bersaglio molecolare dei polifenoli alla base dei loro effetti biologici. Radico libero Biol. Med. 2013, 64, 40–51. [CrossRef]

129. Vina, J.; Borra, C.; Miquel, J. Teorie dell'invecchiamento. IUBMB Life 2007, 59, 249–254. [CrossRef] [PubMed]

130. Nyberg, L.; Pudas, S. Invecchiamento della memoria di successo. Anno. Rev. Psychol. 2019, 70, 219–243. [CrossRef]

131. Blagosklonny, MV Invecchiamento: ROS o TOR. Ciclo cellulare 2008, 7, 3344–3354. [CrossRef]

132. Harman, D. Invecchiamento: una teoria basata sulla chimica dei radicali liberi e delle radiazioni. J. Gerontol. 1956, 11, 298–300. [CrossRef]

133. Caso, B.; Sies, H.; Boveris, A. Metabolismo dell'idroperossido negli organi dei mammiferi. Fisiolo. Rev. 1979, 59, 527–605. [CrossRef]

134. Chang, ST; Cho, CS; Parco, S.; Yu, S.; Kang, SW; Rhee, SG Perossiredossina III, una perossidasi specifica per i mitocondri, regola la segnalazione apoptotica da parte dei mitocondri. J. Biol. Chim. 2004, 279, 41975–41984. [CrossRef] [PubMed]

135. Dodig, S.; Cepelak, I.; Pavic, I. Segni distintivi di senescenza e invecchiamento. Biochimica. Med. 2019, 29, 030501. [CrossRef]

136. Herranz, N.; Gil, J. Meccanismi e funzioni della senescenza cellulare. J.Clin. Investire. 2018, 128, 1238–1246. [CrossRef]

137. Vicencio, JM; Galluzzi, L.; Tajeddine, N.; Ortiz, C.; Criollo, A.; Tasdemir, E.; Morselli, E.; Ben Younes, A.; Maiuri, MC; Lavandero, S.; et al. Senescenza, apoptosi o autofagia? Quando una cellula danneggiata deve decidere il suo percorso: una mini-recensione. Gerontologia 2008, 54, 92–99. [CrossRef] [PubMed]

138. Yanagi, S.; Tsubouchi, H.; Miura, A.; Matsuo, A.; Matsumoto, N.; Nakazato, M. Gli impatti della senescenza cellulare nella polmonite anziana e nelle malattie polmonari legate all'età che aumentano il rischio di infezioni respiratorie. Int. J. Mol. Sci. 2017, 18, 503. [CrossRef]

139. Senza legge, C.; Wang, C.; Jurk, D.; Mertz, A.; Zglinicki, T.; Passos, JF Valutazione quantitativa dei marcatori per la senescenza cellulare. Esp. Gerontolo. 2010, 45, 772–778. [CrossRef] [PubMed]

140. Sone, H.; Kagawa, Y. La senescenza delle cellule beta pancreatiche contribuisce alla patogenesi del diabete di tipo 2 nei topi diabetici indotti da una dieta ricca di grassi. Diabetologia 2005, 48, 58–67. [CrossRef]

141. Fyhrquist, F.; Saijonmaa, O.; Strandberg, T. I ruoli della senescenza e dell'accorciamento dei telomeri nelle malattie cardiovascolari. Nat. Rev. Cardiolo. 2013, 10, 274–283. [CrossRef]

142. Minammino, T.; Orimo, M.; Shimizu, I.; Kunieda, T.; Yokoyama, M.; Ito, T.; Nojima, A.; Nabetani, A.; Okke, Y.; Matsubara, H.; et al. Un ruolo cruciale per la p53 del tessuto adiposo nella regolazione dell'insulino-resistenza. Nat. Med. 2009, 15, 1082–1087. [CrossRef] [PubMed]

143. Unterluggauer, H.; Hampel, B.; Zwerschke, W.; Jansen-Durr, P. Morte cellulare associata alla senescenza delle cellule endoteliali umane: il ruolo dello stress ossidativo. Esp. Gerontolo. 2003, 38, 1149-1160. [CrossRef] [PubMed]

144. Giuseppe, JA; Cutler, RC Il ruolo dello stress ossidativo nei cambiamenti di trasduzione del segnale e nella perdita cellulare nella senescenza. Anna. Accademico di New York. Sci. 1994, 738, 37–43. [CrossRef]

cistanche sold near me

145. Hickson, LJ; Langhi Prata, LGP; Bobart SA; Evans, TK; Giorgadze, N.; Hashmi, SK; Hermann, SM; Jensen, MD; Jia, Q.; Giordania, KL; et al. I senolitici riducono le cellule senescenti negli esseri umani: rapporto preliminare da uno studio clinico di Dasatinib più quercetina in individui con malattia renale diabetica. EBioMedicina 2019, 47, 446–456. [CrossRef]

146. Giustizia, JN; Nambiar, AM; Tchkonia, T.; LeBrasseur, NK; Pasquale, R.; Hashmi, SK; Prata, L.; Masternak, MM; Kritchevsky, SB; Musi, N.; et al. Senolytics nella fibrosi polmonare idiopatica: risultati di uno studio pilota in aperto, first-in-human. EBioMedicina 2019, 40, 554–563. [CrossRef] [PubMed]

147. Menicacci, B.; Cipriani, C.; Margheri, F.; Mocali, A.; Giovannelli, L. Modulazione del fenotipo infiammatorio associato alla senescenza nei fibroblasti umani da fenoli di oliva. Int. J. Mol. Sci. 2017, 18, 2275. [CrossRef] [PubMed]

148.Katsiki, M.; Condrogianni, N.; Chinou, I.; Rivett, AJ; Gonos, ES L'oleuropeina costituente dell'oliva presenta proprietà stimolatrici del proteasoma in vitro e conferisce estensione della durata della vita dei fibroblasti embrionali umani. Ringiovanimento Ris. 2007, 10, 157–172. [CrossRef]

149. Rahimifard, M.; Baeri, M.; Bahadar, H.; Moini-Nodeh, S.; Khalid, M.; Haghi-Aminjan, H.; Maometto, H.; Abdollahi, M. Effetti terapeutici dell'acido gallico nella regolazione della senescenza e del diabete; uno studio in vitro. Molecole 2020, 25, 5875. [CrossRef]

150. Jung, HJ; Suh, Y. MiRNA circolanti nell'invecchiamento e nelle malattie legate all'invecchiamento. J. Genet. Genomica 2014, 41, 465–472. [CrossRef]

151. Smith-Vikos, T.; Slack, FJ MicroRNA e il loro ruolo nell'invecchiamento. J. Cell Sci. 2012, 125, 7–17. [CrossRef] [PubMed]

152. Verma, p.; Agostino, GJ; Ammar, signor; Tashiro, A.; Cohen, SM Un ruolo neuroprotettivo per il microRNA miR-1000 mediato dalla limitazione dell'eccitotossicità del glutammato. Nat. Neurosci. 2015, 18, 379–385. [CrossRef]

153. Jung, HJ; Lee, KP; Milholland, B.; Shin, YJ; Kang, JS; Kwon, KS; Suh, Y. Profilo completo del miRNA del muscolo scheletrico e del siero nell'atrofia muscolare del topo indotta e normale durante l'invecchiamento. J. Gerontol. Un Biol. Sci. Med. Sci. 2017, 72, 1483–1491. [CrossRef] [PubMed]

154. Feng Q.; Zheng, S.; Zheng, J. Il ruolo emergente dei microRNA nel rimodellamento osseo e le sue implicazioni terapeutiche per l'osteoporosi. Biosci. Rep. 2018, 38. [CrossRef]

155. Shao H.; Yang, L.; Wang, L.; Tang, B.; Wang, J.; Li, Q. MicroRNA-34a protegge le cellule del miocardio dal danno da ischemia-riperfusione inibendo l'autofagia attraverso la regolazione dell'espressione del TNF-alfa. Biochimica. Cell Biol. 2018, 96, 349–354. [CrossRef]

156. Kinser, HE; Pincus, Z. MicroRNA come modulatori della longevità e del processo di invecchiamento. Ronzio. Genetta. 2020, 139, 291–308. [CrossRef] [PubMed]

157.Gu, H.; Wu, W.; Yuan, B.; Tang, D.; Guo, D.; Chen, Y.; Xiao, Y.; Hu, L.; Chen, D.; Sha, J.; et al. La genisteina aumenta la regolazione di miR-20a per interrompere la spermatogenesi prendendo di mira Limk1. Oncotarget 2017, 8, 58728–58737. [CrossRef] [PubMed]

158. Milenkovic, D.; Berghe, WV; Morand, C.; Claudio, S.; van de Sandt, A.; Gorressen, S.; Monfoulet, LE; Chirumamilla, CS; Declerck, K.; Szic, KSV; et al. Un'analisi della rete di biologia dei sistemi dei cambiamenti genomici nutri (epi) nelle cellule endoteliali esposte ai metaboliti dell'epicatechina. Sci. Rep. 2018, 8, 15487. [CrossRef]

159. Tomé-Carneiro, J.; Larrosa, M.; Yanez-Guascon, MJ; Davalos, A.; Gil-Zamorano, J.; Gonzálvez, M.; García-Almagro, FJ; Ruiz Ros, JA; Tomas-Barberan, FA; Espin, JC; et al. L'integrazione di un anno con un estratto d'uva contenente resveratrolo modula l'espressione di citochine e microRNA correlati all'infiammazione nelle cellule mononucleari del sangue periferico del diabete di tipo 2 e nei pazienti ipertesi con malattia coronarica. Pharmacol. Ris. 2013, 72, 69–82. [CrossRef]

160. Feletou, M. Iperpolarizzazione dipendente dall'endotelio e disfunzione endoteliale. J. Cardiovasc. Pharmacol. 2016, 67, 373–387. [CrossRef]

161. Soloviev, AI; Kizub, IV Meccanismi di disfunzione vascolare evocati da radiazioni ionizzanti e possibili bersagli per la sua correzione farmacologica. Biochimica. Pharmacol. 2019, 159, 121–139. [CrossRef]

162. Puca, AA; Carrizzo, A.; Ferrario, A.; Villa, F.; Vecchione, C. ossido nitrico sintasi endoteliale, integrità vascolare e longevità umana eccezionale. Radicale libero. Ris. 2012, 9, 26. [CrossRef]

163. Schulz, E.; Jansen, T.; Wenzel, P.; Daiber, A.; Munzel, T. Ossido nitrico, tetraidrobiopterina, stress ossidativo e disfunzione endoteliale nell'ipertensione. Antiossidante. Segnale redox. 2008, 10, 1115–1126. [CrossRef] [PubMed]

164. Schulz, E.; Gorì, T.; Munzel, T. Stress ossidativo e disfunzione endoteliale nell'ipertensione. Hypertens. Ris. 2011, 34, 665–673. [CrossRef]

165. Faria, AM; Papadimitriou, A.; Silva, KC; Lopes de Faria, JM; Lopes de Faria, JB Il disaccoppiamento dell'ossido nitrico sintasi endoteliale è migliorato dal tè verde nel diabete sperimentale ristabilendo i livelli di tetraidrobiopterina. Diabete 2012, 61, 1838–1847. [CrossRef]

166. Landmesser, U.; Dikalov, S.; Prezzo, CS; McCann, L.; Fukai, T.; Olanda, SM; Mitch, NOI; Harrison, DG L'ossidazione della tetraidrobiopterina porta al disaccoppiamento dell'ossido nitrico sintasi delle cellule endoteliali nell'ipertensione. J.Clin. Investire. 2003, 111, 1201–1209. [CrossRef]

167. Stoclet, JC; Chataigneau, T.; Ndiaye, M.; Quercia, MS; El Bedoui, J.; Châtaigneau, M.; Schini-Kerth, VB Protezione vascolare da polifenoli alimentari. Euro. J. Pharmacol. 2004, 500, 299–313. [CrossRef]

168. Grassi, D.; Necozione, S.; Lippi, C.; Croce, G.; Valeri, L.; Pasqualetti, P.; Desideri, G.; Blumberg, JB; Ferri, C. Cocoa riduce la pressione sanguigna e la resistenza all'insulina e migliora la vasodilatazione endotelio-dipendente negli ipertesi. Ipertensione 2005, 46, 398–405. [CrossRef] [PubMed]

169. López-Sepulveda, R.; Jiménez, R.; Romero, M.; Zarzuelo, MJ; Sanchez, M.; Gomez-Guzman, M.; Varga, F.; O'Valle, F.; Zarzuelo, A.; Perez-Vizcaino, F.; et al. I polifenoli del vino migliorano la funzione endoteliale nei grandi vasi di ratti femmine spontaneamente ipertesi. Ipertensione 2008, 51, 1088–1095. [CrossRef]

170. Xu, JW; Ikeda, K.; Yamori, Y. Sovraregolazione dell'ossido nitrico sintasi endoteliale da parte della cianidina -3- glucoside, un tipico pigmento antocianico. Ipertensione 2004, 44, 217–222. [CrossRef]

171. Wu, T-W.; Zeng, L.-H.; Wu, J.; Fung, K.‑P. Morin: un pigmento del legno che protegge tre tipi di cellule umane nel sistema cardiovascolare dai danni dell'ossiradicale. Biochimica. Pharmacol. 1994, 47, 1099–1103. [CrossRef]

172. Taguchi, K.; Tano, I.; Kaneko, N.; Matsumoto, T.; Kobayashi, T. I polifenoli vegetali Morin e Quercetin salvano la produzione di ossido nitrico nell'aorta del topo diabetico attraverso percorsi distinti. Biomed. Farmacotere. 2020, 129. [CrossRef]

173. Taguchi, K.; Hida, M.; Hasegawa, M.; Matsumoto, T.; Kobayashi, T. Il polifenolo dietetico morin salva la disfunzione endoteliale in un modello murino diabetico attivando la via Akt/eNOS. Mol. Nutr. ricerca alimentare 2016, 60, 580–588. [CrossRef] [PubMed]

174. Baur, JA; Sinclair, DA Potenziale terapeutico del resveratrolo: L'evidenza in vivo. Nat. Rev. Drug Discov. 2006, 5, 493–506. [CrossRef]

175. Bradamante S.; Barenghi, L.; Villa, A. Effetti protettivi cardiovascolari del resveratrolo. Cardiovascolare. Drug Rev. 2004, 22, 169–188. [CrossRef] [PubMed]

176. Wallerath, T.; Deckert, G.; Ternes, T.; Anderson, H.; Li, H.; Witte, K.; Forstermann, U. Resveratrol, una fitoalessina polifenolica presente nel vino rosso, migliora l'espressione e l'attività dell'ossido nitrico sintasi endoteliale. Circolazione 2002, 106, 1652–1658. [CrossRef] [PubMed]

177. Canzone, J.; EHI.; Luo, C.; Feng, B.; Corse, F.; Xu, H.; Ci, Z.; Xu, R.; Han, L.; Zhang, D. Nuovi progressi nella farmacologia dell'acido protocatechuico: un composto ingerito frequentemente e pesantemente negli alimenti e nelle erbe quotidiane. Pharmacol. Ris. 2020, 161, 105109. [CrossRef]

178. Masodsai, K.; Lin, AA; Chaunchaiyakul, R.; Do, CT; Lee, DS; Yang, AL La somministrazione di acido protocatecuico per dodici settimane migliora il fattore di crescita insulino-indotto e insulino-simile-1-indotto vasorilassamento e attività antiossidanti nei ratti che invecchiano spontaneamente ipertesi. Nutrienti 2019, 11, 699. [CrossRef] [PubMed]

179. Castañeda-Ovando, A.; Pacheco-Hernández, MdL; Páez-Hernández, ME; Rodriguez, JA; Galán-Vidal, CA Studi chimici sugli antociani: una revisione. Chimica alimentare. 2009, 113, 859–871. [CrossRef]

180.Rocha, BS; Gago, B.; Barbosa, RM; Laranjinha, J. I polifenoli dietetici generano ossido nitrico dal nitrito nello stomaco e inducono il rilassamento della muscolatura liscia. Tossicologia 2009, 265, 41–48. [CrossRef]

181. Santos-Parker, JR; Strahler, TR; Bassett, CJ; Bispham, Nuova Zelanda; Chonchol, MB; Seals, DR L'integrazione di curcumina migliora la funzione endoteliale vascolare negli adulti sani di mezza età e anziani aumentando la biodisponibilità dell'ossido nitrico e riducendo lo stress ossidativo. Invecchiamento 2017, 9, 187–208. [CrossRef]

182. Iside, C.; Scafuro, M.; Nebbioso, A.; Altucci, L. SIRT1 Attivazione da parte di sostanze fitochimiche naturali: una panoramica. Davanti. Pharmacol. 2020, 11, 1225. [CrossRef]

183. Li, D.; Cui, Y.; Wang, X.; Liu, F.; Li, X. L'estratto di polifenoli di mela allevia l'accumulo di lipidi nelle cellule HepG2 esposte agli acidi grassi liberi attraverso l'attivazione dell'autofagia mediata dalla segnalazione SIRT1/AMPK. Fitotre. Ris. 2020. [CrossRef] [PubMed]

184. Csiszar, A.; Labinskyy, N.; Pinto, JT; Ballabh, P.; Zhang, H.; Losonczy, G.; Pearson, K.; Cabo, Road; Pacher, P.; Zhang, C.; et al. Il resveratrolo induce la biogenesi mitocondriale nelle cellule endoteliali. Sono. J. Physiolo. Circ. Cuore Fisiolo. 2009, 297, H13–H20. [CrossRef] [PubMed]

185. Uomo, AWC; Li, H.; Xia, N. Il ruolo di Sirtuin1 nella regolazione della funzione endoteliale, del rimodellamento arterioso e dell'invecchiamento vascolare. Davanti. Fisiolo. 2019, 10. [CrossRef] [PubMed]

186. Lagouge, M.; Argmann, C.; Gerhart-Hines, Z.; Meziane, H.; Lerino, C.; Daussin, F.; Messadeq, N.; Milne, J.; Lambert, P.; Elliott, P.; et al. Il resveratrolo migliora la funzione mitocondriale e protegge dalle malattie metaboliche attivando SIRT1 e PGC-1alfa. Cella 2006, 127, 1109–1122. [CrossRef] [PubMed]

187. Zang, M.; Xu, S.; Maitland Toolan, KA; Zuccolo, A.; Hou, X.; Jiang, B.; Wierzbicki, M.; Verbeuren, TJ; Cohen, i polifenoli RA stimolano la chinasi proteica attivata da AMP, abbassano i lipidi e inibiscono l'aterosclerosi accelerata nei topi diabetici con deficit del recettore LDL. Diabete 2006, 55, 2180–2191. [CrossRef] [PubMed]

188. Sugiyama, M.; Kawahara-Miki, R.; Kawana, H.; Shirasuna, K.; Kuwayama, T.; Sintesi mitocondriale indotta da Iwata, H. Resveratrol e autofagia negli ovociti derivati ​​dai primi follicoli antrali di mucche anziane. J. Riproduzione. Dev. 2015, 61, 251–259. [CrossRef]

189 Visioli, F.; Rodríguez-Pérez, M.; Gómez-Torres, Ó.; Pintado-Losa, C.; Burgos-Ramos, E. Hydroxytyrosol migliora l'energetica mitocondriale di un modello cellulare della malattia di Alzheimer. Nutr. Neurosci. 2020, 1–11. [CrossRef] [PubMed]

190. Wu, S.; Tian, ​​L. Diverse sostanze fitochimiche e bioattività nell'antico frutto e nel moderno melograno alimentare funzionale (Punica granatum). Molecole 2017, 22, 1606. [CrossRef] [PubMed]

191. Tresserra-Rimbau, A.; Medina-Remon, A.; Perez-Jimenez, J.; Martinez-González, MA; Covas, Michigan; Corella, D.; Salas-Salvado, J.; Gómez-Gracia, E.; Lapetra, J.; Aros, F.; et al. Assunzione dietetica e principali fonti alimentari di polifenoli in una popolazione spagnola ad alto rischio cardiovascolare: lo studio PREDIMED. Nutr. Metab. Cardiovascolare. Dis. 2013, 23, 953–959. [CrossRef]

192. Schaffer S.; Asseburg, H.; Kutz, S.; Muller, NOI; Eckert, GP Effetti dei polifenoli sull'invecchiamento cerebrale e sul morbo di Alzheimer: focus sui mitocondri. Mol. Neurobiolo. 2012, 46, 161–178. [CrossRef] [PubMed]

193. Rein, MJ; Renouf, M.; Cruz-Hernandez, C.; Actis-Goretta, L.; Thakkar, SK; da Silva Pinto, M. Biodisponibilità di composti alimentari bioattivi: un viaggio impegnativo verso la bioefficacia. Fr. J.Clin. Pharmacol. 2013, 75, 588–602. [CrossRef] [PubMed]

194. Zhang, L.; Vergine, C.; Si, H. Effetti antinfiammatori sinergici e meccanismi di sostanze fitochimiche combinate. J. Nutr. Biochimica. 2019, 69, 19–30. [CrossRef] [PubMed]


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