Regolazione dinamica del crosstalk del reticolo endoplasmatico mitocondriale durante l'omeostasi e l'invecchiamento delle cellule staminali

Jul 14, 2023

La terapia cellulare esercita un profondo potenziale terapeutico per la cura di un ampio spettro di malattie. Le cellule staminali adulte risiedono all'interno di una nicchia dinamica specificata in vivo, che è essenziale per il mantenimento omeostatico continuo dei tessuti attraverso il bilanciamento dell'auto-rinnovamento con la selezione del lignaggio. Nel frattempo, le cellule staminali adulte possono essere multipotenti o unipotenti e sono presenti sia negli stati quiescenti che in quelli di divisione attiva in vivo dei mammiferi, che possono passare l'uno all'altro stato in risposta a segnali biofisici attraverso meccanismi mediati dai mitocondri, come alterazioni nella respirazione mitocondriale e metabolismo. In generale, le cellule staminali facilitano la riparazione dei tessuti dopo l'homing tessuto-specifico attraverso vari meccanismi, tra cui l'immunomodulazione del microambiente locale, la differenziazione in cellule funzionali, il "potenziamento" cellulare tramite secrezione paracrina, immunoregolazione e trasferimento mitocondriale intercellulare. È interessante notare che caratteristiche specifiche della fonte cellulare sono state riportate tra diverse cellule staminali adulte derivate da tessuti con proprietà funzionali distinte dovute ai diversi microambienti in vivo, nonché proprietà funzionali differenziali in diversi veicoli extracellulari derivati ​​da cellule staminali derivate da tessuti, mitocondriali metabolismo e capacità di trasferimento mitocondriale. Qui, abbiamo riassunto l'attuale comprensione dei ruoli delle dinamiche mitocondriali durante l'omeostasi e l'invecchiamento delle cellule staminali e la differenziazione specifica del lignaggio. Inoltre, abbiamo proposto potenziali caratteristiche uniche della firma molecolare mitocondriale tra diverse cellule staminali derivate dalla fonte e potenziali associazioni tra l'invecchiamento delle cellule staminali e la comunicazione mitocondriale-reticolo endoplasmatico (ER), nonché potenziali nuove strategie per l'intervento anti-invecchiamento e l'invecchiamento sano.

Il glicoside di cistanche può anche aumentare l'attività della SOD nei tessuti del cuore e del fegato e ridurre significativamente il contenuto di lipofuscina e MDA in ciascun tessuto, eliminando efficacemente vari radicali reattivi dell'ossigeno (OH-, H₂O₂, ecc.) e proteggendo dai danni al DNA causati da radicali OH. I glicosidi feniletanoidi di Cistanche hanno una forte capacità di scavenging dei radicali liberi, una maggiore capacità di riduzione rispetto alla vitamina C, migliorano l'attività della SOD nella sospensione dello sperma, riducono il contenuto di MDA e hanno un certo effetto protettivo sulla funzione della membrana dello sperma. I polisaccaridi Cistanche possono migliorare l'attività di SOD e GSH-Px negli eritrociti e nei tessuti polmonari di topi sperimentalmente senescenti causati dal D-galattosio, nonché ridurre il contenuto di MDA e collagene nei polmoni e nel plasma e aumentare il contenuto di elastina, hanno un buon effetto scavenging su DPPH, prolunga il tempo di ipossia nei topi senescenti, migliora l'attività della SOD nel siero e ritarda la degenerazione fisiologica del polmone nei topi senescenti sperimentalmente Con la degenerazione morfologica cellulare, gli esperimenti hanno dimostrato che Cistanche ha la buona capacità antiossidante e ha il potenziale per essere un farmaco per prevenire e curare le malattie dell'invecchiamento cutaneo. Allo stesso tempo, l'echinacoside in Cistanche ha una significativa capacità di eliminare i radicali liberi DPPH e ha la capacità di eliminare le specie reattive dell'ossigeno e prevenire la degradazione del collagene indotta dai radicali liberi, e ha anche un buon effetto di riparazione sul danno dell'anione dei radicali liberi della timina.

cistanche powder bulk

Fare clic su Supplemento Cistanche Tubulosa

【Per maggiori informazioni:george.deng@wecistanche.com / WhatApp:86 13632399501】

FATTI

● La nicchia delle cellule staminali è essenziale per le decisioni sul destino delle cellule attraverso la regolazione dell'omeostasi delle cellule staminali e le dinamiche mitocondriali di fusione e fissione attraverso il bilanciamento dell'auto-rinnovamento e la differenziazione specifica del lignaggio, nonché la quiescenza e l'attivazione delle cellule staminali.

• Nel sangue periferico esistono mitocondri privi di cellule circolanti, che possono essere coinvolti in vari processi fisiopatologici.

● I mitocondri sono organelli altamente dinamici che cambiano la loro morfologia in risposta a segnali cellulari e stati di differenziazione.

• Il crosstalk tra mitocondri e reticolo endoplasmatico è implicato nella progressione dell'invecchiamento.

● L'ordinamento asimmetrico e la distribuzione di mitocondri anziani e giovani sono coinvolti in modo critico nella regolazione della staminalità delle cellule staminali.

DOMANDE APERTE

●Il declino funzionale mitocondriale è coinvolto nella progressione dell'invecchiamento delle cellule staminali attraverso la localizzazione subcellulare dipendente dall'età e la ridistribuzione dei mitocondri, causando così la perdita delle proprietà delle cellule staminali?

● Le connessioni ei trasferimenti mitocondriali sono implicati nelle terapie cellulari attraverso la condivisione e la ricezione di mitocondri energetici e giovani di cellule di tessuti danneggiati da cellule staminali funzionali?

• L'accoppiamento dello stress del reticolo endoplasmatico (ER) e della differenziazione cellulare è associato all'interazione tra crosstalk mitocondriale-ER?

● È possibile alleviare l'invecchiamento delle cellule staminali o ottenere il ringiovanimento delle cellule staminali invecchiate passando da uno stress prolungato o eccessivo del reticolo endoplasmatico (ER) a uno stress ER adattivo attraverso la regolazione della funzione mitocondriale e della nicchia delle cellule staminali?

INTRODUZIONE

Le terapie basate sulle cellule staminali esercitano un profondo potenziale terapeutico per curare un ampio spettro di malattie [1, 2]. Le cellule staminali adulte risiedono in una nicchia dinamica specifica che è essenziale per il mantenimento omeostatico continuo dei tessuti attraverso il bilanciamento dell'auto-rinnovamento con la selezione del lignaggio [3, 4]. Nel frattempo, le cellule staminali adulte possono essere multipotenti o unipotenti e sono presenti sia in stati quiescenti che attivamente in divisione in vivo dei mammiferi, che possono passare l'uno all'altro stato in risposta a vari segnali intrinseci o estrinseci attraverso meccanismi mediati dai mitocondri, come alterazioni nella respirazione e nel metabolismo mitocondriale [4-9]. Inoltre, la coincidenza del reticolo endoplasmatico (ER) e dei mitocondri e le loro interconnessioni dinamiche e diafonia sono coinvolte in una serie di processi cellulari, tra cui l'omeostasi mitocondriale nella fusione e fissione, l'autofagia e la formazione dell'inflammasoma [10, 11].

cistanche portugal

Nuove tecniche emergenti negli ultimi anni, come la trascrittomica a cellula singola per l'analisi del turnover spaziale e temporale di alcuni processi cellulari, possono consentire di far progredire la nostra comprensione della regolazione genica dinamica nel mantenimento delle cellule staminali all'interno della nicchia delle cellule staminali, attivazione e mobilizzazione delle cellule staminali, lignaggio specifiche, fenotipi molecolari tessuto-specifici nelle cellule staminali adulte, identificazione dei principali tipi di cellule e loro localizzazione, nonché fonti cellulari e spaziali di fattori di crescita chiave e citochine [12-18].

Diversità ed eterogeneità dei mitocondri

I mitocondri sono organelli complessi esistenti in una rete che subisce continui cambiamenti dinamici morfologici attraverso la fissione e la fusione, che è cruciale per il mantenimento della pluripotenza e della capacità di differenziazione delle cellule staminali [19-24]. I mitocondri di solito subiscono continui cambiamenti dinamici morfologici attraverso eventi di fissione e fusione controllati dalle grandi GTPasi Drp1, Mfn1, Mfn2 e Opa1 (fusione), che sono importanti per la funzione mitocondriale, e il loro squilibrio causerebbe disfunzione cellulare e varie malattie [25-28 ]. I cambiamenti metabolici sono essenziali per l'impegno del lignaggio cellulare durante la differenziazione delle cellule staminali mesenchimali, accompagnati da alterazioni nella morfologia e nella dinamica mitocondriale [21, 22, 29]. Le caratteristiche morfologiche distinte dei mitocondri delle cellule staminali mesenchimali si verificano durante diversi stati di specifica del lignaggio (Fig. 1).


In generale, le cellule staminali facilitano la riparazione dei tessuti dopo l'homing tessuto-specifico attraverso vari meccanismi, come l'immunomodulazione del microambiente locale, la differenziazione in cellule funzionali [30, 31], il "potenziamento" cellulare tramite la secrezione paracrina [32-34], l'immunomodulazione [ 35, 36] e trasferimento mitocondriale intercellulare [37-40]. Recenti studi hanno dimostrato il trasferimento mitocondriale intercellulare all'interno della rete osteocitaria-dendritica [41]. Curiosamente, sono state osservate anche potenziali connessioni e comunicazioni mitocondriali tra condrociti maturi co-coltivati ​​e cellule staminali ex vivo (Fig. 2A). Nel frattempo, sono state riportate caratteristiche specifiche della fonte cellulare tra diverse cellule staminali adulte derivate da tessuti con proprietà funzionali distinte [5, 42], nonché proprietà funzionali differenziali in diversi veicoli extracellulari derivati ​​da cellule staminali derivate da tessuti [43, 44] , metabolismo mitocondriale [45] e capacità di trasferimento mitocondriale [46]. Sorprendentemente, studi recenti hanno riportato la presenza di mitocondri circolanti privi di cellule all'interno del sangue periferico, suggerendo la diversità delle forme esistenti di mitocondri [47, 48]. Pertanto, possono esistere modelli distinti di espressione genica mitocondriale tra diverse cellule staminali derivate da tessuti, a causa dell'eterogeneità delle cellule staminali e delle diverse popolazioni di DNA mitocondriale (mt-DNA) [48-55]. Allo stesso tempo, la visualizzazione dei nucleoidi replicanti del mt-DNA ha suggerito il collegamento fisico tra ER e mitocondri (Fig. 2B) [56-58]. Pertanto, la manipolazione del mt-DNA all'interno delle cellule può rappresentare un potente approccio per lo sviluppo di interventi terapeutici per il trattamento delle malattie mitocondriali.

cistanche flaccid

Regolazione metabolica mitocondriale sui destini delle cellule staminali

Si ritiene generalmente che le cellule staminali alimentino lo sviluppo e la riparazione dei tessuti e che queste attività siano controllate dal microambiente locale o dalla nicchia delle cellule staminali. È stato dimostrato che popolazioni altamente eterogenee di cellule staminali/progenitrici residenti risiedono all'interno di organi e tessuti adulti [55, 59-62]. Un equilibrio appropriato tra auto-rinnovamento e differenziazione è essenziale per la funzione delle cellule staminali sia durante lo sviluppo che durante l'omeostasi dei tessuti per tutta la vita [63]. Allo stato stazionario, le cellule staminali adulte sono cellule quiescenti all'interno di una nicchia. Entrambe le reti di segnalazione intrinseca ed estrinseca cellulare, come la segnalazione associata alla dinamica mitocondriale, sono state segnalate per mettere a punto l'auto-rinnovamento e la differenziazione delle cellule staminali e sono coinvolte nell'omeostasi e nella riparazione dei tessuti [64, 65].


In particolare, la plasticità mitocondriale, come il metabolismo mitocondriale e la catena respiratoria mitocondriale, è vitale per le decisioni sul destino cellulare e la funzione delle cellule staminali [66-69]. L'interruttore metabolico dei mitocondri è necessario per l'attivazione delle cellule staminali e l'attività del ciclo cellulare [70]. Nel frattempo, le prove accumulate hanno suggerito un'associazione causale tra la disfunzione mitocondriale e i principali fenotipi associati all'invecchiamento. L'auto-rinnovamento di tessuti e organi negli organismi che invecchiano richiede cellule staminali, che hanno l'insolita capacità di dividersi asimmetricamente in una cellula figlia che mantiene le proprietà delle cellule staminali e un'altra che si differenzia in un particolare tipo di tessuto. Inoltre, è stato riportato che i mitocondri si distribuiscono passivamente durante la mitosi dopo il loro rilascio dai microtubuli [71]. È importante sottolineare che la localizzazione subcellulare e la distribuzione di mitocondri giovani e vecchi determinano le proprietà di staminalità nelle cellule staminali della progenie durante le divisioni cellulari asimmetriche. Successivamente, le cellule figlie che mantengono una natura di cellula staminale ereditano mitocondri giovani, mentre i mitocondri più vecchi vengono ereditati dalle cellule più differenziate [72]. L'accumulo di mitocondri invecchiati porterebbe all'invecchiamento cellulare e al declino funzionale cellulare [70, 73]. Mohrin et al. [74] hanno ulteriormente chiarito un ramo regolatorio della risposta proteica mitocondriale non ripiegata (UPRmt) che è accoppiato al metabolismo energetico cellulare e alla proliferazione nelle cellule staminali. Lo stress del ripiegamento proteico mitocondriale ha innescato un checkpoint metabolico che regola il ciclo cellulare, mentre la deregolazione di questo percorso ha interferito con la quiescenza delle cellule staminali e ha compromesso il potenziale rigenerativo [74]. Pertanto, la funzione mitocondriale può rappresentare un importante determinante del potenziale rigenerativo delle cellule staminali.

which cistanche is best

Le cellule staminali possiedono un potenziale di multi-differenziazione in vari tipi di cellule, il che le rende rilevanti dal punto di vista medico per il trattamento di una varietà di malattie e lesioni. Tuttavia, rimane un grosso ostacolo alla terapia con cellule staminali nelle cliniche, vale a dire l'efficienza limitata per creare cellule differenziate terminali completamente funzionali e specializzate. La dinamica mitocondriale è cruciale per la determinazione del destino cellulare delle cellule staminali [75, 76]. È importante sottolineare che diversi stati cellulari richiedono specifiche richieste metaboliche per supportare funzioni specializzate [77]. Pertanto, per un impegno di lignaggio specifico efficiente sono necessari un metabolismo e una dinamica ossidativi mitocondriali efficienti [21, 78-83].


Sorprendentemente, studi recenti riportano che l'autofagia mediata da chaperone e un relativo metabolita nelle cellule staminali embrionali, noto anche come processo di autoalimentazione, sono emerse come promettenti nuove terapie per la rigenerazione di tessuti e organi danneggiati [84]. Allo stesso tempo, le prove accumulate hanno indicato strette associazioni tra il metabolismo mitocondriale e la differenziazione delle cellule staminali [85, 86]. Gli studi hanno dimostrato che le cellule staminali embrionali di topo classificate per il potenziale di membrana mitocondriale a riposo basso e alto (ΔΨmL e ΔΨmH) sono indistinguibili in termini di morfologia e livelli di espressione dei marcatori di pluripotenza, mentre differiscono notevolmente nei tassi metabolici, suggerendo che l'accoppiamento tra metabolismo intrinseco parametri e il destino delle cellule staminali possono fornire indizi per nuove strategie di arricchimento e approcci terapeutici della terapia con cellule staminali [87, 88]. Inoltre, uno studio recente ha dimostrato la mobilizzazione del lattato di Mg2 plus intracellulare, indicando potenziali collegamenti tra il trasporto mitocondriale di Mg2 plus con i principali circuiti di feedback metabolico e la bioenergetica mitocondriale (Fig. 3) [89].

cistanche lost empire

Correlazioni tra funzioni mitocondriali e invecchiamento

Le cellule staminali adulte sono essenziali per l'omeostasi e la rigenerazione dei tessuti, ma sono suscettibili alla senescenza durante l'invecchiamento [90-92], accompagnata da microambienti di invecchiamento attorno alle cellule staminali adulte [93, 94]. I principali segni distintivi dell'invecchiamento negli organismi dei mammiferi includono instabilità genomica, logoramento dei telomeri, alterazioni epigenetiche, perdita di proteostasi, rilevamento deregolato dei nutrienti, disfunzione mitocondriale, senescenza cellulare, esaurimento delle cellule staminali e comunicazione intercellulare alterata [95]. La degenerazione o la disfunzione dei tessuti e degli organi che invecchiano è attribuita al deterioramento delle cellule staminali adulte [95-97], che può derivare da dinamiche mitocondriali disordinate e funzioni mitocondriali in declino [98-100]. L'attività mitocondriale e il metabolismo sono determinanti importanti per la specificazione del destino delle cellule staminali [87, 101].


Gli studi hanno dimostrato l'importanza della forma ossidata della nicotinammide adenina dinucleotide cellulare sull'attività mitocondriale come interruttore fondamentale per modulare la senescenza delle cellule staminali adulte muscolari [102, 103]. SIRT3, una sirtuina dei mammiferi che regola il panorama globale dell'acetilazione delle proteine ​​mitocondriali e riduce lo stress ossidativo, viene soppressa durante l'invecchiamento. Inoltre, la sovraregolazione di SIRT3 nelle cellule staminali ematopoietiche (HSC) invecchiate ha migliorato la capacità rigenerativa delle HSC [104]. Inoltre, il mantenimento dell'auto-rinnovamento di una popolazione Tie2 plus HSC purificata si basa sulla clearance mitocondriale [105]. Ulteriori studi hanno identificato un ramo normativo dell'UPRmt, che è mediato dall'interazione tra SIRT7 e NRF1, che è accoppiato al metabolismo e alla proliferazione dell'energia cellulare. Deregolazione di un checkpoint metabolico mediato da UPRmt come fattore principale reversibile per l'invecchiamento delle HSC [74]. Inoltre, l'infiammazione cronica sistemica è stata segnalata come una caratteristica importante dell'invecchiamento, che è criticamente implicata nel processo di invecchiamento delle cellule staminali [106-108]. Uno studio recente ha scoperto l'attivazione aberrante dell'inflammasoma NLRP3 avviata dallo stress mitocondriale come fattore reversibile del declino funzionale durante l'invecchiamento delle HSC [109]. Nel frattempo, gli studi hanno documentato i ruoli cruciali di PTPMT1 (una fosfatasi mitocondriale simile a PTEN) nella regolazione metabolica dell'auto-rinnovamento e differenziazione delle HSC [110].

Mitocondri-ER crosstalk e invecchiamento

In particolare, è stato dimostrato che lo stress ER sopravvissuto si accoppia con la differenziazione e il funzionamento alterati dei condrociti, che facilita la sopravvivenza e il recupero attraverso la risposta proteica spiegata adattiva (UPR) durante la fisiopatologia della condrodisplasia [111, 112]. Inoltre, gli studi hanno suggerito l'intimo legame tra l'adattamento allo stress e il processo di invecchiamento [113]. Le risposte allo stress e il processo di invecchiamento possono condividere caratteristiche e meccanismi comuni inizialmente derivanti da studi su organismi modello [114, 115], in cui è stato dimostrato che vari percorsi molecolari sono implicati nella progressione del processo di invecchiamento, incluso l'insulina/fattore di crescita insulino-simile , sirtuine, bersagli della rapamicina (TOR) e chinasi attivata da AMP. Pertanto, l'induzione intrinseca di programmi di difesa dallo stress e il conseguente adattamento possono diventare una potenziale strategia per aumentare l'aspettativa di vita [114]. Di solito, lo stress ER lieve attiva l'UPR adattativo da un lato. L'UPR adattativo favorisce l'attenuazione dello stress in risposta allo stress cellulare, che è stato recentemente segnalato per preservare l'auto-rinnovamento delle HSC ematopoietiche e preleucemiche tramite la segnalazione dell'enzima 1 che richiede inositolo /X-box-binding protein 1 [116]. D'altra parte, tuttavia, oltre un certo grado di danno ER, vale a dire una risposta UPR prolungata, innescherebbe percorsi apoptotici (Fig. 4) [117-120]. Gli studi hanno suggerito che l'esaurimento delle proteine ​​​​coinvolte nella regolazione del crosstalk mitocondriale-ER, come il TOR dei mammiferi, porterebbe ad un aumento dell'apoptosi, dell'autofagia e della disfunzione cellulare [121, 122]. Al contrario, l'aumento artificiale dei contatti ER-mitocondri nelle cellule ripristinerebbe la vitalità cellulare [89, 119, 123, 124]. Gli studi hanno ulteriormente identificato ruoli critici dei contatti ER-mitocondri nella biogenesi dei compartimenti di derivazione mitocondriale [125-127], che possono svolgere ruoli essenziali nell'adattamento cellulare alle condizioni di stress ambientale [127].

cistanche pros and cons

È importante sottolineare che l'invecchiamento è uno dei principali fattori che causano l'aumento prolungato dello stress ER, accompagnato di conseguenza da una disfunzione mitocondriale [128]. Pertanto, l'attenuazione dello stress ER è un potenziale approccio per il miglioramento e il ripristino della funzione mitocondriale negli organismi che invecchiano. Inoltre, gli studi hanno suggerito la correlazione tra la riorganizzazione spaziale dei mitocondri e l'aumento dei livelli di ATP, il consumo di ossigeno, il potere riduttivo e l'aumento dell'assorbimento mitocondriale di Ca2 plus [129, 130]. Tuttavia, il disaccoppiamento degli organelli o il blocco del trasferimento di Ca2 plus ha compromesso la risposta metabolica, rendendo le cellule più vulnerabili allo stress ER [129, 131]. Di conseguenza, lo stress ER induce un aumento precoce del metabolismo mitocondriale che dipende in modo cruciale dall'accoppiamento degli organelli e dal trasferimento di Ca2 plus, che, potenziando la bioenergetica cellulare, stabilisce la base metabolica per l'adattamento a questa risposta [129, 132]. Poiché l'invecchiamento è uno dei principali fattori che causano un aumento dello stress ER e della disfunzione mitocondriale, l'attenuazione dello stress ER favorisce l'anti-invecchiamento [128]. Pertanto, è stata segnalata una migliore biogenesi mitocondriale associata a una migliore efficienza della catena di trasporto degli elettroni, che può diventare un potenziale approccio terapeutico anti-invecchiamento per bloccare l'accumulo di specie reattive dell'ossigeno e promuovere la sopravvivenza cellulare attraverso l'attenuazione dello stress ER [133].

CONCLUSIONI

Complessivamente, la plasticità mitocondriale gioca un ruolo centrale nella regolazione dell'attività e delle funzioni delle cellule staminali. Le reti di segnalazione intrinseche ed estrinseche sono responsabili della regolazione dinamica della funzione mitocondriale e dell'adattamento ai segnali intrinseci ed estrinseci per le decisioni definitive sul destino cellulare. L'interazione e il crosstalk tra i microambienti di invecchiamento, lo stress ER e le dinamiche mitocondriali inter e intracellulari sono implicati nella progressione dell'invecchiamento delle cellule staminali e dei tessuti e degli organi funzionalmente declinati. Ulteriori indagini approfondite sull'invecchiamento delle cellule staminali associato alla comunicazione mitocondriale-ER e sui cambiamenti negli stati della cromatina e nelle dinamiche mitocondriali all'interno della nicchia rigenerativa non solo stimoleranno lo sviluppo di nuovi bersagli farmaceutici per la cura dei disturbi legati all'età attraverso il targeting dei mitocondri-ER- percorsi di segnalazione associati, ma forniscono anche nuove informazioni sull'attivazione delle cellule staminali mediata dai mitocondri durante la rigenerazione dei tessuti. L'identificazione di specifiche firme molecolari mitocondriali tra diverse cellule staminali derivate dalla fonte può far progredire la nostra comprensione della biologia delle cellule staminali e far luce su nuove strategie per una sana longevità e migliori risultati terapeutici della terapia cellulare.

cistanche tubulosa supplement

RIFERIMENTI

1. Cable J, Fuchs E, Weissman I, Jasper H, Glass D, Rando T, et al. Cellule staminali adulte e medicina rigenerativa: una relazione del simposio. Anna. NY Acad. Sci. 2020;1462:27.

2. Yamanaka S. Promessa e sfide della terapia cellulare basata su cellule staminali pluripotenti. Cellula staminale cellulare. 2020;27:523–31.

3. Adam RC, Yang H, Rockowitz S, Larsen SB, Nikolova M, Oristian DS, et al. I fattori pionieristici governano le dinamiche dei super potenziatori nella plasticità delle cellule staminali e nella scelta del lignaggio. Natura. 2015;521:366–70.

4. Li L, Clevers H. Coesistenza di cellule staminali adulte quiescenti e attive nei mammiferi. Scienza. 2010;327:542–5.

5. Visvader JE, Clevers H. Disegni specifici del tessuto delle gerarchie delle cellule staminali. Nat. Cell Biol. 2016;18:349–55.

6. Bond AM, Ming GL, Song H. Cellule staminali neurali dei mammiferi adulti e neurogenesi: cinque decenni dopo. Cellula staminale cellulare. 2015;17:385–95.

7. Ransom RC, Carter AC, Salhotra A, Leavitt T, Marecic O, Murphy MP, et al. Le cellule staminali meccanoresponsive acquisiscono il destino della cresta neurale nella rigenerazione della mascella. Natura. 2018;563:514–21.

8. Zheng M, Kim SK, Joe Y, Back SH, Cho HR, Kim HP, et al. Il rilevamento dello stress del reticolo endoplasmatico da parte della protein chinasi chinasi del reticolo endoplasmatico simile all'RNA promuove la biogenesi adattativa del DNA mitocondriale e la sopravvivenza cellulare tramite l'attività dell'eme ossigenasi-1/monossido di carbonio. FASEB J. 2012;26:2558–68.

9. Feng J, Lu S, Ding Y, Zheng M, Wang X. L'omocisteina attiva le cellule T migliorando l'accoppiamento reticolo endoplasmatico-mitocondri e aumentando la respirazione mitocondriale. Cellula proteica. 2016;7:391–402.

10. Marchi S, Patergnani S, Pinton P. La connessione reticolo endoplasmatico-mitocondri: un tocco, molteplici funzioni. Biochim Biofisi. Atti. 2014;1837:461–9.

11. Genovese I, Vezzani B, Danese A, Modesti L, Vitto VAM, Corazzi V, et al. I mitocondri come responsabili delle decisioni per il destino delle cellule tumorali: dai percorsi di segnalazione alle strategie terapeutiche. Calcio cellulare. 2020;92:102308.

12. Cheng JB, Sedgewick AJ, Finnegan AI, Harirchian P, Lee J, Kwon S, et al. Programmazione trascrizionale dell'epidermide umana normale e infiammata alla risoluzione di una singola cellula. Cell Rep. 2018; 25: 871–83.

13. Feng C, Chan WCW, Lam Y, Wang X, Chen P, Niu B, et al. Lgr5 e Col22a1 segnano le cellule progenitrici nel lignaggio verso i condrociti articolari giovanili. Stem Cell Rep. 2019;13:713–29.

14. Pallafacchina G, Francois S, Regnault B, Czarny B, Dive V, Cumano A, et al. Una cellula staminale tessuto-specifica adulta nella sua nicchia: un'analisi del profilo genico di cellule satellite muscolari quiescenti e attivate in vivo. ricerca sulle cellule staminali 2010;4:77–91.

15. Hussenet T, Dembele D, Martinet N, Vignaud JM, du Manoir S. Un fenotipo molecolare di cellule staminali specifiche del tessuto adulto viene attivato nelle cellule staminali del cancro epiteliale e correlato all'esito del paziente. Ciclo cellulare. 2010;9:321–7.

16. Liang R, Ghaffari S. Mitochondria e FOXO3 nell'omeostasi delle cellule staminali, una finestra sulla determinazione del destino delle cellule staminali ematopoietiche. J.Bioenerg. Biomembra. 2017;49:343–6.

17. Baccin C, Al-Sabah J, Velten L, Helbling PM, Grunschlager F, Hernandez Malmierca P, et al. La trascrittomica unicellulare e spaziale combinata rivela l'organizzazione di nicchia del midollo osseo molecolare, cellulare e spaziale. Nat. Cell Biol. 2020;22:38–48.

18. Finnegan A, Cho RJ, Luu A, Harirchian P, Lee J, Cheng JB, et al. La trascrittomica a singola cellula rivela il turnover spaziale e temporale dei regolatori della differenziazione dei cheratinociti. Genetta anteriore. 2019;10:775.

19. Xu X, Duan S, Yi F, Ocampo A, Liu GH, Izpisua Belmonte JC. Regolazione mitocondriale nelle cellule staminali pluripotenti. Cell Metab. 2013;18:325–32.

20. Arciere SL. Dinamica mitocondriale-fissione e fusione mitocondriale nelle malattie umane. N. inglese J.Med. 2013;369:2236–51.

21. Forni MF, Peloggia J, Trudeau K, Shirihai O, Kowaltowski AJ. L'impegno delle cellule staminali mesenchimali murine alla differenziazione è regolato dalla dinamica mitocondriale. Cellule staminali. 2016;34:743–55.

22. Lin W, Xu L, Pan Q, Lin S, Feng L, Wang B, et al. Le cellule staminali mesenchimali con sovraespressione di Lgr5- aumentano la guarigione delle fratture attraverso la regolazione delle vie di segnalazione Wnt/ERK e le dinamiche mitocondriali. FASEB J. 2019;33:8565–77.

23. Liu X, Weaver D, Shirihai O, Hajnoczky G. "Kiss-and-run" mitocondriale: interazione tra motilità mitocondriale e dinamiche di fusione-fissione. EMBO J. 2009;28:3074–89.

24. Kasahara A, Cipolat S, Chen Y, Dorn GW, Scorrano L. La fusione mitocondriale dirige la differenziazione dei cardiomiociti tramite la calcineurina e la segnalazione di Notch. Scienza. 2013;342:734–7.

25. Wang X, Su B, Siedlak SL, Moreira PI, Fujioka H, ​​Wang Y, et al. La sovrapproduzione di amiloide-beta causa dinamiche mitocondriali anormali attraverso la modulazione differenziale delle proteine ​​di fissione/fusione mitocondriale. Proc. Nazionale Acad. Sci. STATI UNITI D'AMERICA. 2008;105:19318–23.

26. Walter J, Bolognin S, Antony PMA, Nickels SL, Poovathingal SK, Salamanca L, et al. Le cellule staminali neurali dei pazienti con malattia di Parkinson presentano morfologia e funzionalità mitocondriali aberranti. Stem Cell Rep. 2019;12:878–89.

27. Korobova F, Ramabhadran V, Higgs HN. Un passaggio dipendente dall'actina nella fissione mitocondriale mediata dalla formina INF2 associata a ER. Scienza. 2013;339:464–7.

28. Angelova PR, Barilani M, Lovejoy C, Dossena M, Vigano M, Seresini A, et al. La disfunzione mitocondriale nelle cellule staminali mesenchimali parkinsoniane compromette la differenziazione. Redox Biol. 2018;14:474–84.

29. Guo J, Ren R, Yao X, Ye Y, Sun K, Lin J, et al. PKM2 sopprime l'osteogenesi e facilita l'adipogenesi regolando la segnalazione della beta-catenina e la fusione e fissione mitocondriale. Invecchiamento (Albany NY). 2020;12:3976–92.

30. Gojo S, Gojo N, Takeda Y, Mori T, Abe H, Kyo S, et al. Cardiovasculogenesi in vivo mediante iniezione diretta di cellule staminali mesenchimali adulte isolate. Esp. Cella Ris. 2003;288:51–9.

31. Su J, Guo L, Wu C. Un'interazione mechanoresponsive PINCH -1- Notch2 regola la differenziazione della muscolatura liscia delle cellule staminali mesenchimali placentari umane. Cellule staminali 2021;39:650–68.

32. Mirotsou M, Zhang Z, Deb A, Zhang L, Gnecchi M, Noiseux N, et al. La proteina 2 correlata all'effetto crespo secreto (Sfrp2) è il fattore paracrino rilasciato dalle cellule staminali mesenchimali chiave che media la sopravvivenza e la riparazione del miocardio. Proc. Nazionale Acad. Sci. STATI UNITI D'AMERICA. 2007;104:1643–8.

33. Roefs MT, Sluijter JPG, Vader P. Proteine ​​associate alla vescicola extracellulare nella riparazione dei tessuti. Tendenze Cellulare Biol. 2020;30:990–1013.

34. Hou Y, Lin W, Li Y, Sun Y, Liu Y, Chen C, et al. Le cellule staminali mesenchimali differenziate de-osteogeniche accelerano la guarigione delle fratture mediante mir-92b. J. Ortop. Trad. 2021;27:25–32.

35. Akiyama K, Chen C, Wang D, Xu X, Qu C, Yamaza T, et al. L'immunoregolazione indotta dalle cellule staminali mesenchimali coinvolge l'apoptosi delle cellule T mediata da FAS-ligando/FAS. Cellula staminale cellulare. 2012;10:544–55.

36. Shi Y, Wang Y, Li Q, Liu K, Hou J, Shao C, et al. Meccanismi immunoregolatori delle cellule mesenchimali staminali e stromali nelle malattie infiammatorie. Nat. Rev. Nephrol. 2018;14:493–507.

37. Acquistapace A, Bru T, Lesault PF, Figeac F, Coudert AE, le Coz O, et al. Le cellule staminali mesenchimali umane riprogrammano i cardiomiociti adulti verso uno stato simile a un progenitore attraverso la fusione cellulare parziale e il trasferimento dei mitocondri. Cellule staminali. 2011;29:812–24.

38. Ahmad T, Mukherjee S, Pattnaik B, Kumar M, Singh S, Rehman R, et al. Miro1 regola il trasporto mitocondriale intercellulare e migliora l'efficacia del salvataggio delle cellule staminali mesenchimali. EMBO J. 2014;33:994–1010.

39. Paliwal S, Chaudhuri R, Agrawal A, Mohanty S. Capacità rigenerative delle cellule staminali mesenchimali attraverso il trasferimento mitocondriale. J.Biomed. Sci. 2018;25:31.

40. Luz-Crawford P, Hernandez J, Djouad F, Luque-Campos N, Caicedo A, CarrereKremer S, et al. La repressione delle cellule staminali mesenchimali delle cellule Th17 è innescata dal trasferimento mitocondriale. ricerca sulle cellule staminali Là. 2019;10:232.

41. Gao J, Qin A, Liu D, Ruan R, Wang Q, Yuan J, et al. Il reticolo endoplasmatico media il trasferimento mitocondriale all'interno della rete dendritica degli osteociti. Sci. Avv. 2019;5:eaaw7215.

42. Xu LL, Liu YM, Sun YX, Wang B, Xiong YP, Lin WP, et al. La fonte tissutale determina i potenziali di differenziazione delle cellule staminali mesenchimali: uno studio comparativo delle cellule staminali mesenchimali umane dal midollo osseo e dal tessuto adiposo. ricerca sulle cellule staminali Là. 2017;8:1–11.

43. Katsuda T, Ochiya T. Firme molecolari della riparazione del tessuto mediata dalla vescicola extracellulare derivata dalle cellule staminali mesenchimali. ricerca sulle cellule staminali Là. 2015;6:212.

44. Wang ZG, He ZY, Liang S, Yang Q, Cheng P, Chen AM. Analisi proteomica completa degli esosomi derivati ​​dal midollo osseo umano, dal tessuto adiposo e dalle cellule staminali mesenchimali del cordone ombelicale. ricerca sulle cellule staminali Là. 2020;11:511.

45. Wanet A, Caruso M, Domelevo Entfellner JB, Najar M, Fattaccioli A, Demazy C, et al. L'asse alfa del fattore di trascrizione 7-come il 2-coattivatore gamma del recettore attivato dal proliferatore del perossisoma-1 collega la biogenesi mitocondriale e lo spostamento metabolico con l'impegno delle cellule staminali per la differenziazione epatica. Cellule staminali. 2017;35:2184–97.

46. ​​Paliwal S, Chaudhuri R, Agrawal A, Mohanty S. Le MSC specifiche del tessuto umano dimostrano abilità differenziali di trasferimento dei mitocondri che possono determinare le loro capacità rigenerative. ricerca sulle cellule staminali Là. 2018;9:298.

47. Chiu RW, Chan LY, Lam NY, Tsui NB, Ng EK, Rainer TH, et al. Analisi quantitativa del DNA mitocondriale circolante nel plasma. Clino. Chim. 2003;49:719–26.

48. Al Amir Dache Z, Otandault A, Tanos R, Pastor B, Meddeb R, Sanchez C, et al. Il sangue contiene mitocondri competenti respiratori privi di cellule circolanti. FASEB J. 2020;34:3616–30.

49. Nombela-Arrieta C, Ritz J, Silberstein LE. La natura sfuggente e la funzione delle cellule staminali mesenchimali. Nat. Rev. Mol. Cell Biol. 2011;12:126–31.

50. Parker DJ, Iyer A, Shah S, Moran A, Hjelmeland AB, Basu MK, et al. Un nuovo pool mitocondriale di ciclina E, regolato da Drp1, è collegato alla proliferazione cellulare dipendente dalla densità cellulare. J. Cell Sci. 2015;128:4171–82.

51. St John JC, Facucho-Oliveira J, Jiang Y, Kelly R, Salah R. Trasmissione, replicazione ed ereditarietà del DNA mitocondriale: un viaggio dal gamete attraverso l'embrione e nella prole e nelle cellule staminali embrionali. Ronzio. Riprod. Aggiornamento. 2010;16:488–509.

52. Kelly RD, Rodda AE, Dickinson A, Mahmud A, Nefzger CM, Lee W, et al. Gli aplotipi del DNA mitocondriale definiscono i modelli di espressione genica nelle cellule staminali embrionali pluripotenti e differenzianti. Cellule staminali. 2013;31:703–16.

53. Lin W, Xu L, Li G. Un nuovo protocollo per l'isolamento e la coltura di cellule progenitrici multipotenti dall'urina umana. J. Ortop. Trad. 2019;19:12–7.

54. Wilson A, Hodgson-Garms M, Frith JE, Genever P. Molteplicità delle cellule stromali mesenchimali: trovare la giusta via per la terapia. Front Immunol. 2019;10:1112.

55. Morita Y, Ema H, Nakauchi H. Eterogeneità e gerarchia all'interno del compartimento delle cellule staminali ematopoietiche più primitivo. J. Esp. Med. 2010;207: 1173–82.

56. Ban-Ishihara R, Ishihara T, Sasaki N, Mihara K, Ishihara N. La dinamica della struttura nucleoide regolata dalla fissione mitocondriale contribuisce alla riformazione delle creste e al rilascio del citocromo c. Proc. Nazionale Acad. Sci. STATI UNITI D'AMERICA. 2013;110:11863–8.

57. Friedman JR, Lackner LL, West M, DiBenedetto JR, Nunnari J, Voeltz GK. ER, i tubuli segnano i siti della divisione mitocondriale. Scienza 2011; 334: 358–62.

cistanche tubulosa adalah

58. Lewis SC, Uchiyama LF, Nunnari J. I contatti ER-mitocondri accoppiano la sintesi del mtDNA con la divisione mitocondriale nelle cellule umane. Scienza. 2016;353:aaf5549.

59. Gherghiceanu M, Popescu LM. Precursori di cardiomiociti e telociti nella nicchia di cellule staminali epicardiche: immagini al microscopio elettronico. J. Cellulare Mol. Med. 2010;14:871–7.

60. Russell KC, Phinney DG, Lacey MR, Barrilleaux BL, Meyertholen KE, O'Connor KC. Il test in vitro ad alta capacità per quantificare l'eterogeneità clonale nel potenziale di trilignaggio delle cellule staminali mesenchimali rivela una complessa gerarchia dell'impegno del lignaggio. Cellule staminali. 2010;28:788–98.

61. Godwin S, Ward D, Pedone E, Homer M, Fletcher AG, Marucci L. Un modello esteso per l'espressione genica eterogenea dipendente dalla cultura e le dinamiche di proliferazione nelle cellule staminali embrionali di topo. NPJ Sist. Biol. Appl. 2017;3:19.

62. Rennert RC, Januszyk M, Sorkin M, Rodrigues M, Maan ZN, Duscher D, et al. L'analisi trascrizionale microfluidica a singola cellula identifica razionalmente nuovi profili di marcatori di superficie per migliorare le terapie cellulari. Nat. Comune. 2016;7:11945.

63. Bigarella CL, Liang R, Ghaffari S. Cellule staminali e impatto della segnalazione ROS. Sviluppo 2014;141:4206–18.

64. Zona LI. Controllo intrinseco ed estrinseco dell'auto-rinnovamento delle cellule staminali ematopoietiche. Natura 2008;453:306–13.

65. Lisowski P, Kannan P, Mlody B, Prigione A. Mitocondri e controllo dinamico dell'omeostasi delle cellule staminali. EMBO Rep. 2018;19:e45432. 66. Campello S, Scorrano L. Cambiamenti di forma mitocondriale: orchestrare la fisiopatologia cellulare. EMBO Rep. 2010;11:678–84.

67. Bahat A, Gross A. Plasticità mitocondriale nella regolazione del destino cellulare. J. Biol. Chim. 2019;294:13852–63.

68. Maryanovich M, Zaltsman Y, Ruggiero A, Goldman A, Shachnai L, Zaidman SL, et al. Un percorso MTCH2 che reprime il metabolismo dei mitocondri regola il destino delle cellule staminali ematopoietiche. Nat. Comune. 2015;6:7901.

69. Anso E, Weinberg SE, Diebold LP, Thompson BJ, Malinge S, Schumacker PT, et al. La catena respiratoria mitocondriale è essenziale per la funzione delle cellule staminali ematopoietiche. Nat. Cell Biol. 2017;19:614–25.

70. Hinge A, He J, Bartram J, Javier J, Xu J, Fjellman E, et al. I mitocondri segregati asimmetricamente forniscono memoria cellulare della storia replicativa delle cellule staminali ematopoietiche e guidano l'attrito HSC. Cellula staminale cellulare. 2020;26:420–30e6.

71. Chung JY, Steen JA, Schwarz TL. Lo spargimento motorio indotto dalla fosforilazione è necessario alla mitosi per una corretta distribuzione e l'ereditarietà passiva dei mitocondri. Cell Rep. 2016; 16: 2142–55.

72. Katajisto P, Dohla J, Chaffer CL, Pentinmikko N, Marjanovic N, Iqbal S, et al. Cellule staminali. La ripartizione asimmetrica dei mitocondri invecchiati tra le cellule figlie è necessaria per la staminalità. Scienza. 2015;348:340–3.

73. Yamashita YM, Mahowald AP, Perlin JR, Fuller MT. Ereditarietà asimmetrica del centrosoma madre contro figlia nella divisione delle cellule staminali. Scienza. 2007;315:518–21.

74. Mohrin M, Shin J, Liu Y, Brown K, Luo H, Xi Y, et al. Invecchiamento delle cellule staminali. Un checkpoint metabolico mediato da UPR mitocondriale regola l'invecchiamento delle cellule staminali ematopoietiche. Scienza. 2015;347:1374–7.

75. Iwata R, Casimir P, Vanderhaeghen P. La dinamica mitocondriale nelle cellule postmitotiche regola la neurogenesi. Scienza. 2020;369:858–62.

76. Ren L, Chen X, Chen X, Li J, Cheng B, Xia J. Dinamiche mitocondriali: fissione e fusione nella determinazione del destino delle cellule staminali mesenchimali. Front Cell Dev. Biol. 2020;8:580070.

77. Agathocleous M, Love NK, Randlett O, Harris JJ, Liu J, Murray AJ, et al. Differenziazione metabolica nella retina embrionale. Nat. Cell Biol. 2012;14:859–64.

78. Chen CT, Shih YRV, Kuo TK, Lee OK, Wei YH. Cambiamenti coordinati nella biogenesi mitocondriale e negli enzimi antiossidanti durante la differenziazione osteogenica delle cellule staminali mesenchimali umane. Cellule staminali. 2008;26:960–8.

79. Chung S, Dzeja PP, Faustino RS, Perez-Terzic C, Behfar A, Terzic A. Il metabolismo ossidativo mitocondriale è necessario per la differenziazione cardiaca delle cellule staminali. Nat. Clino. Pratica. Medico cardiovascolare. 2007;4:S60–S7.

80. Folmes CD, Dzeja PP, Nelson TJ, Terzic A. Plasticità metabolica nell'omeostasi e nella differenziazione delle cellule staminali. Cellula staminale cellulare. 2012;11:596–606.

81. Mandal S, Lindgren AG, Srivastava AS, Clark AT, Banerjee U. La funzione mitocondriale controlla la proliferazione e il potenziale di differenziazione precoce delle cellule staminali embrionali. Cellule staminali. 2011;29:486–95.

82. Khacho M, Clark A, Svoboda DS, Azzi J, MacLaurin JG, Meghaizel C, et al. Le dinamiche mitocondriali influenzano l'identità delle cellule staminali e le decisioni sul destino regolando un programma trascrizionale nucleare. Cellula staminale cellulare. 2016;19:232–47.

83. Hoque A, Sivakumaran P, Bond ST, Ling NXY, Kong AM, Scott JW, et al. L'inibizione della proteina di fissione mitocondriale Drp1 promuove la differenziazione mesodermica cardiaca delle cellule staminali pluripotenti umane. Cell Morte Discov. 2018;4:39.

84. Xu Y, Zhang Y, Garcia-Canaveras JC, Guo L, Kan M, Yu S, et al. L'autofagia mediata da chaperone regola la pluripotenza delle cellule staminali embrionali. Scienza. 2020;369:397–403.

85. TeSlaa T, Chaikovsky AC, Lipchina I, Escobar SL, Hochedlinger K, Huang J, et al. alfa-chetoglutarato accelera la differenziazione iniziale delle cellule staminali pluripotenti umane innescate. Cell Metab. 2016;24:485–93.

86. Lu V, Dahan P, Ahsan FM, Patananan AN, Roy IJ, Torres A Jr, et al. Il metabolismo mitocondriale e la glutammina sono essenziali per la differenziazione del mesoderma delle cellule staminali pluripotenti umane. Cella Ris. 2019;29:596–8.

87. Schieke SM, Ma M, Cao L, McCoy JP Jr, Liu C, Hensel NF, et al. Il metabolismo mitocondriale modula la differenziazione e la capacità di formazione del teratoma nelle cellule staminali embrionali di topo. J. Biol. Chim. 2008;283:28506–12.

88. Ma MS, Kannan V, de Vries AE, Czepiel M, Wesseling EM, Balasubramaniyan V, et al. Caratterizzazione e confronto di osteoblasti derivati ​​da cellule staminali embrionali di topo e cellule staminali pluripotenti indotte. J. Osso min. Metab. 2017;35:21–30.

89. Daw CC, Ramachandran K, Enslow BT, Maity S, Bursic B, Novello MJ, et al. Lattato suscita dinamica ER-mitocondriale Mg(2 plus) per integrare il metabolismo cellulare. Cellula. 2020;183:474–89 e17.

90. Alt EU, Senst C, Murthy SN, Slakey DP, Dupin CL, Chaffin AE, et al. L'invecchiamento altera le proprietà delle cellule staminali mesenchimali residenti nei tessuti. ricerca sulle cellule staminali 2012;8:215–25.

91. Berger E, Rath E, Yuan D, Waldschmitt N, Khaloian S, Allgauer M, et al. La funzione mitocondriale controlla la staminalità e la proliferazione epiteliale intestinale. Nat. Comune. 2016;7:13171.

92. Zong Z, Zhang X, Yang Z, Yuan W, Huang J, Lin W, et al. Cellule staminali mesenchimali invecchiate ringiovanite precondizionando gradualmente l'artrosi indotta da intervento chirurgico nei conigli. Osso Jt. Ris. 2021;10:10–21.

93. Chakkalakal JV, Jones KM, Basson MA, Brack AS. La nicchia invecchiata interrompe la quiescenza delle cellule staminali muscolari. Natura. 2012;490:355–60.

94. Maryanovich M, Zahalka AH, Pierce H, Pinho S, Nakahara F, Asada N, et al. La degenerazione del nervo adrenergico nel midollo osseo guida l'invecchiamento della nicchia delle cellule staminali ematopoietiche. Nat. Med. 2018;24:782–91.

95. Lopez-Otin C, Blasco MA, Partridge L, Serrano M, Kroemer G. I tratti distintivi dell'invecchiamento. Cellula. 2013;53:1194–217.

96. Oh J, Lee YD, Scommesse AJ. Invecchiamento delle cellule staminali: meccanismi, regolatori e opportunità terapeutiche. Nat. Med. 2014;20:870–80.

97. Baker N, Boyette LB, Tuan RS. Caratterizzazione delle cellule staminali mesenchimali derivate dal midollo osseo nell'invecchiamento. Osso 2015;70:37–47.

98. Chen C, Liu Y, Liu R, Ikenoue T, Guan KL, Zheng P. TSC-mTOR mantiene la quiescenza e la funzione delle cellule staminali ematopoietiche reprimendo la biogenesi mitocondriale e le specie reattive dell'ossigeno. J. Esp. Med. 2008;205: 2397–408.

99. Jaiswal S, Fontanillas P, Flannick J, Manning A, Grauman PV, Mar BG, et al. Ematopoiesi clonale correlata all'età associata a esiti avversi. N. inglese J.Med. 2014;371:2488–98.

100. Shyh-Chang N, Daley GQ, Cantley LC. Metabolismo delle cellule staminali nello sviluppo e nell'invecchiamento dei tessuti. Sviluppo 2013;140:2535–47.

101. Vannini N, Girotra M, Naveiras O, Nikitin G, Campos V, Giger S, et al. Specificazione del destino delle cellule staminali ematopoietiche tramite modulazione dell'attività mitocondriale. Nat. Comune. 2016;7:13125.

102. Zhang H, Ryu D, Wu Y, Gariani K, Wang X, Luan P, et al. La replezione di NAD( plus ) migliora la funzione mitocondriale e delle cellule staminali e migliora la durata della vita nei topi. Scienza. 2016;352:1436–43.

103. Jin C, Li J, Green CD, Yu X, Tang X, Han D, et al. L'istone demetilasi UTX-1 regola la durata della vita di C. elegan prendendo di mira la via di segnalazione dell'insulina/IGF-1. Cell Metab. 2011;14:161–72.

104. Brown K, Xie S, Qiu X, Mohrin M, Shin J, Liu Y, et al. SIRT3 inverte la degenerazione associata all'invecchiamento. Cell Rep. 2013; 3: 319–27.

105. Ito K, Turcotte R, Cui J, Zimmerman SE, Pinho S, Mizoguchi T, et al. L'auto-rinnovamento di una popolazione di cellule staminali ematopoietiche purificate Tie2 plus si basa sulla clearance mitocondriale. Scienza. 2016;354:1156–60.

106. Chen Z, Amro EM, Becker F, Holzer M, Rasa SMM, Njeru SN, et al. La segnalazione NF-kappaB coesinmediata limita l'auto-rinnovamento delle cellule staminali ematopoietiche nell'invecchiamento e nell'infiammazione. J. Esp. Med. 2019;216:152–75.

107. Youm YH, Grant RW, McCabe LR, Albarado DC, Nguyen KY, Ravussin A, et al. L'inflammasoma canonico Nlrp3 collega l'infiammazione sistemica di basso grado al declino funzionale dell'invecchiamento. Cell Metab. 2013;18:519–32.

108. Youm YH, Kanneganti TD, Vandanmagsar B, Zhu X, Ravussin A, Adijiang A, et al. L'inflammasoma Nlrp3 promuove la morte del timo legata all'età e l'immunosenescenza. Cell Rep. 2012; 1: 56–68.

109. Luo H, Mu WC, Karki R, Chiang HH, Mohrin M, Shin JJ, et al. L'attivazione aberrante dell'inflammasoma NLRP3 avviata dallo stress mitocondriale regola il deterioramento funzionale dell'invecchiamento delle cellule staminali ematopoietiche. Cell Rep. 2019;26:945–54 e4.

110. Yu WM, Liu X, Shen J, Jovanovic O, Pohl EE, Gerson SL, et al. La regolazione metabolica da parte della fosfatasi mitocondriale PTPMT1 è necessaria per la differenziazione delle cellule staminali ematopoietiche. Cellula staminale cellulare. 2013;12:62–74.

111. Tsang KY, Chan D, Cheslett D, Chan WC, So CL, Melhado IG, et al. Lo stress del reticolo endoplasmatico sopravvissuto è accoppiato alla differenziazione e alla funzione alterate dei condrociti. PLoS Biol. 2007;5:e44.

112. Hetz C. La risposta proteica spiegata: controllo delle decisioni sul destino cellulare sotto stress ER e oltre. Nat. Rev. Mol. Cell Biol. 2012;13:89–102.

113. Kourtis N, Tavernarakis N. Percorsi di risposta allo stress cellulare e invecchiamento: intricate relazioni molecolari. EMBO J. 2011;30:2520–31.

114. Haigis MC, Yankner BA. La risposta allo stress dell'invecchiamento. Mol. Cellula. 2010;40:333–44.

115. Taormina G, Ferrante F, Vieni S, Grassi N, Russo A, Mirisola MG. Longevità: lezione da organismi modello. Geni (Basilea). 2019;10:518.

116. Liu L, Zhao M, Jin X, Ney G, Yang KB, Peng F, et al. La segnalazione dello stress del reticolo endoplasmatico adattivo tramite IRE1alpha-XBP1 preserva l'auto-rinnovamento delle cellule staminali ematopoietiche e pre-leucemiche. Nat. Cell Biol. 2019;21:328–37.

117. Bravo R, Gutierrez T, Paredes F, Gatica D, Rodriguez AE, Pedrozo Z, et al. Reticolo endoplasmatico: lo stress ER regola la bioenergetica mitocondriale. Int. J. Biochem. Cell Biol. 2012;44:16–20.

118. Chan WCW, Tsang KY, Cheng YW, Ng VCW, Chik H, Tan ZJ, et al. L'attivazione della risposta proteica spiegata negli osteociti provoca iperostosi coerente con la displasia craniodiafisaria. Ronzio. Mol. Genet. 2017;26:4572–87.

119. Abdullahi A, Barayan D, Vinaik R, Diao L, Yu N, Jeschke MG. L'attivazione della segnalazione dello stress ER aumenta la mortalità dopo un trauma maggiore. J. Cellulare Mol. Med. 2020;24:9764–73.

120. Ricci D, Marrocco I, Blumenthal D, Dibos M, Eletto D, Vargas J, et al. Il raggruppamento di IRE1alpha dipende dal rilevamento dello stress ER ma non dalla sua attività RNasi. FASEB J. 2019;33:9811–27.

121. Bravo-Sagua R, Parra V, Ortiz-Sandoval C, Navarro-Marquez M, Rodriguez AE, Diaz-Valdivia N, et al. La caveolina-1 compromette il rimodellamento mediato da PKA-DRP1-della comunicazione dei mitocondri ER durante la fase iniziale dello stress ER. La morte cellulare è diversa. 2019;26:1195–212.

122. Hamasaki M, Furuta N, Matsuda A, Nezu A, Yamamoto A, Fujita N, et al. Gli autofagosomi si formano nei siti di contatto ER-mitocondri. Natura. 2013;495:389–93.

123. Cortez L, Sim V. Il potenziale terapeutico degli accompagnatori chimici nelle malattie del ripiegamento proteico. Prione 2014;8:97–202.

124. Friedman JR, Webster BM, Mastronarde DN, Verhey KJ, Voeltz GK. La dinamica di scorrimento ER e i contatti mitocondriali ER si verificano sui microtubuli acetilati. J.Cell Biol. 2010;190:363–75.

125. Inglese AM, Schuler MH, Xiao T, Kornmann B, Shaw JM, Hughes AL. I contatti ERmitocondri promuovono la biogenesi compartimentale di derivazione mitocondriale. J.Cell Biol. 2020;219:e202002144.

126. Goodrum JM, Lever AR, Coody TK, Gottschling DE, Hughes ALRsp5. e Mdm30 rimodellano la rete mitocondriale in risposta allo stress del vacuolo indotto dall'età. Mol. Biol. Cellula. 2019;30:2141–54.

127. Schuler MH, English AM, Campbell TJ, Shaw JM, Hughes AL. I compartimenti derivati ​​dai mitocondri facilitano l'adattamento cellulare allo stress degli amminoacidi. [Prestampa]. 2020. Disponibile su https://doi.org/10.1101/2020.03.13.991091.

128. Chen Q, Samidurai A, Thompson J, Hu Y, Das A, Willard B, et al. Disfunzione mitocondriale mediata dallo stress del reticolo endoplasmatico nei cuori anziani. Biochim. Biofisica. Acta Mol. Base Dis. 2020;1866:165899.

129. Bravo R, Vicencio JM, Parra V, Troncoso R, Munoz JP, Bui M, et al. L'aumento dell'accoppiamento ERmitocondriale promuove la respirazione mitocondriale e la bioenergetica durante le prime fasi dello stress ER. J. Cell Sci. 2011;124:2143–52.

130. Glancy B, Balaban RS. Ruolo del Ca2 plus mitocondriale nella regolazione dell'energetica cellulare. Biochimica 2012;51:2959–73.

131. Honrath B, Metz I, Bendridi N, Rieusset J, Culmsee C, Dolga AM. La proteina 75 regolata dal glucosio determina l'accoppiamento ER-mitocondriale e la sensibilità allo stress ossidativo nelle cellule neuronali. Cell Morte Discov. 2017;3:17076.

132. Liu X, Hajnoczky G. Ca2 più regolazione dipendente dalle dinamiche mitocondriali da parte del complesso Miro-Milton. Int. J. Biochem. Cell Biol. 2009;41:1972–6.

133. Knupp J, Arvan P, Chang A. L'aumento della respirazione mitocondriale promuove la sopravvivenza dallo stress del reticolo endoplasmatico. La morte cellulare è diversa. 2019;26:487–501.

134. Mironov SL, Ivannikov MV, Johansson M. [Ca2 plus] I la segnalazione tra mitocondri e reticolo endoplasmatico nei neuroni è regolata dai microtubuli. Dal poro di transizione della permeabilità mitocondriale al rilascio di Ca2 plus indotto da Ca2 plus. J. Biol. Chim. 2005;280:715–21.

135. Shan X, Roberts C, Lan Y, Percec I. L'età altera la struttura della cromatina e l'espressione delle proteine ​​​​SUMO in condizioni di stress nelle cellule staminali derivate dall'adiposo umano. Sci. Rep. 2018;8:11502.

136. Liu H, Huang B, Xue S, U KP, Tsang LL, Zhang X, et al. Crosstalk funzionale tra la via mTORC1/p70S6K e l'organizzazione dell'eterocromatina nella senescenza indotta da stress delle MSC. ricerca sulle cellule staminali Là. 2020;11:279.

137. Zhu D, Wu X, Zhou J, Li X, Huang X, Li J, et al. NuRD media la longevità indotta dallo stress mitocondriale tramite il rimodellamento della cromatina in risposta al livello di acetil-CoA. Sci. Avv. 2020;6:eabb2529.

138. Pietrangelo L, D'Incecco A, Ainbinder A, Michelucci A, Kern H, Dirksen RT, et al. Disaccoppiamento dipendente dall'età dei mitocondri dalle unità di rilascio di Ca2( plus ) nel muscolo scheletrico. Oncotarget. 2015;6:35358–71.

139. Miyamoto K, Tajima Y, Yoshida K, Oikawa M, Azuma R, Allen GE, et al. La riprogrammazione verso la totipotenza è notevolmente facilitata dagli effetti sinergici di piccole molecole. Biol. Aprire. 2017;6:415–24.

140. Oliverio S, Beltran JSO, Occhigrossi L, Bordoni V, Agrati C, D'Eletto M, et al. La transglutaminasi di tipo 2 è coinvolta nell'omeostasi delle cellule staminali ematopoietiche. Biochimica. 2020;85:1159–68.

141. Cakouros D, Gronthos S. Il mutevole panorama epigenetico delle cellule staminali/stromali mesenchimali durante l'invecchiamento. Osso 2020;137:115440.

142. Betto RM, Diamante L, Perrera V, Audano M, Rapelli S, Lauria A, et al. Controllo metabolico della metilazione del DNA in cellule pluripotenti naive. Nat. Genet. 2021;53:215–29.

143. Terasaki M, Chen LB, Fujiwara K. I microtubuli e il reticolo endoplasmatico sono strutture altamente interdipendenti. J.Cell Biol. 1986; 103: 1557–68.

144. Choi GE, Oh JY, Lee HJ, Chae CW, Kim JS, Jung YH, et al. I contatti ER-mitocondri mediati dai glucocorticoidi riducono il traffico di recettori AMPA e mitocondri nel terminale cellulare attraverso la destabilizzazione dei microtubuli. Morte cellulare Dis. 2018;9:1137.

145. Liu X, Zhang Y, Ni M, Cao H, Signer RAJ, Li D, et al. Regolazione della biogenesi mitocondriale nell'eritropoiesi mediante traduzione proteica mediata da mTORC1-. Nat. Cell Biol. 2017;19:626–38.

CONTRIBUTI D'AUTORE

GL, XJ e WY-WL: concettualizzazione, progettazione del framework, modifica del manoscritto e supporto finanziario. WL, SC, YW e MW: raccolta di letteratura e dati di ricerca pertinenti, scrittura di manoscritti e preparazione di figure. Tutti gli autori hanno contribuito alla sostanziale discussione dei contenuti e all'approvazione della versione finale.

FINANZIAMENTO

Questo lavoro è stato finanziato da Hong Kong Government Research Grants Council, Collaborative Research Fund (C7030-18G to GL), General Research Fund (19-093- GRF, 14120118, 9054014, N_CityU102/ 15 e 14119115 a GL), Hong Kong Innovation Technology Commission Funds (PRP/050/19FX e ITS/448/18 a GL e XJ), Natural Science Foundation of Guang Dong (2018B030311065 a XJ), National Natural Science Foundation of China (NSFC No. 31970815 to XJ), Hong Kong UGC/GRF (14165217 to XJ), Start‐up Fund of The Chinese University of Hong Kong, Hong Kong SAR (Numero di riferimento 4930991 to WY-WL). Questo studio è stato sostenuto anche dai fondi di ricerca del programma Health@InnoHK lanciato dalla Commissione per la tecnologia dell'innovazione della RAS di Hong Kong, Repubblica popolare cinese, e Programma di medicina sportiva e tecnologia rigenerativa, Lui Che Woo Institute of Innovative Medicine, The Chinese University of Hong Kong.

DICHIARAZIONE ETICA

Non applicabile.

INTERESSI CONFLITTUALI

Gli autori non dichiarano interessi concorrenti.

INFORMAZIONI AGGIUNTIVE

Corrispondenzae le richieste di materiali devono essere indirizzate a WL o GL

Nota dell'editoreSpringer Nature rimane neutrale riguardo alle rivendicazioni giurisdizionali nelle mappe pubblicate e nelle affiliazioni istituzionali.


【Per maggiori informazioni:george.deng@wecistanche.com / WhatApp:86 13632399501】

Potrebbe piacerti anche