Oligosaccaridi come potenziali regolatori del microbiota intestinale e della salute intestinale nella gestione post-COVID-19 Parte 2

6. Il ruolo degli oligosaccaridi nella modulazione del microbiota intestinale e dell'espressione di ACE2 per alleviare la sindrome post-COVID-19

SARS-CoV-2 riesce ad entrare nelle cellule ospiti legandosi al recettore ACE2 sulla superficie cellulare. L’ACE2 è presente in varie cellule del corpo umano, comprese quelle dei tratti respiratorio e gastrointestinale [121]. Una volta all'interno della cellula, il virus utilizza i meccanismi della cellula ospite per replicarsi e diffondersi. I polisaccaridi e gli oligosaccaridi derivati ​​da fonti batteriche, fungine e algali marine sono composti naturali che presentano proprietà bioattive in grado di potenziare il sistema immunitario, inibire la replicazione e l’infettività virale e fornire protezione contro le infezioni virali [122]. La ricerca attuale ha dato priorità all'esplorazione dei polisaccaridi e degli oligosaccaridi solfati come approcci promettenti per combattere la SARS-CoV-2. Ad esempio, l’eparina, un farmaco anticoagulante, ha dimostrato una notevole efficacia a livello nanomolare nel prevenire la trasmissione della SARS-CoV-2[123]. Ciò si ottiene inibendo l’attaccamento virale e riducendo la formazione di coaguli di sangue. Inoltre, i polisaccaridi solfati derivati ​​da piante e organismi marini hanno mostrato effetti inibitori incoraggianti contro il virus in esperimenti di laboratorio, diminuendo efficacemente la replicazione virale e riducendo l’infettività [124]. Queste molecole possono legarsi sia all’ACE2 che alla proteina spike della SARS-CoV-2, il che facilita l’attaccamento del virus all’ACE2 [125,126]. In tal modo, gli oligosaccaridi solfati possono impedire in modo competitivo l'ingresso del virus nelle cellule ospiti, riducendo potenzialmente la gravità dei sintomi post-COVID-19 (Figura 3)

La Cistanche può agire come un anti-fatica e un potenziatore della resistenza, e studi sperimentali hanno dimostrato che il decotto di Cistanche tubulosa potrebbe proteggere efficacemente gli epatociti epatici e le cellule endoteliali danneggiate nei topi nuotatori in carico, sovraregolare l'espressione di NOS3 e promuovere il glicogeno epatico sintesi, esercitando così un’efficacia antifatica. L'estratto di Cistanche tubulosa, ricco di glicosidi feniletanoidi, potrebbe ridurre significativamente i livelli sierici di creatina chinasi, lattato deidrogenasi e lattato e aumentare i livelli di emoglobina (HB) e glucosio nei topi ICR, e questo potrebbe svolgere un ruolo anti-fatica diminuendo il danno muscolare e ritardare l'arricchimento di acido lattico per l'accumulo di energia nei topi. Il composto Cistanche Tubulosa Tablets ha prolungato significativamente il tempo di nuoto sotto carico, ha aumentato la riserva di glicogeno epatico e ha ridotto il livello di urea sierica dopo l'esercizio nei topi, mostrando il suo effetto anti-fatica. Il decotto di Cistanchis può migliorare la resistenza e accelerare l'eliminazione della fatica nei topi che esercitano, e può anche ridurre l'aumento della creatina chinasi sierica dopo l'esercizio con carico e mantenere normale l'ultrastruttura del muscolo scheletrico dei topi dopo l'esercizio, il che indica che ha gli effetti di migliorare la forza fisica e anti-fatica. Cistanchis ha inoltre prolungato significativamente il tempo di sopravvivenza dei topi avvelenati da nitriti e ha migliorato la tolleranza all’ipossia e all’affaticamento.

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I pazienti post-COVID-19 possono ospitare una piccola carica virale nei loro corpi anche dopo essersi ripresi dalla fase acuta, che può attivare i recettori ACE2 intestinali e causare sintomi gastrointestinali come la diarrea [127]. Precedenti studi condotti su ratti gnotobiotici privi di microbiota intestinale naturale hanno scoperto che la presenza di microbiota intestinale è associata ad una maggiore espressione dell’mRNA di ACE2 nel colon. Questa maggiore espressione di ACE2 potrebbe aumentare la suscettibilità all’infezione da SARS-CoV-2 e influenzare la gravità della malattia [128]. Il microbiota intestinale regola l’espressione di ACE2, con un microbioma sano che promuove una maggiore espressione di ACE2 e malattie meno gravi. Alcuni batteri, come Bacteroides dorei, Bacteroides ovatus, Bacteroides thetaiotaomicron e Bacteroides massiliensis, sottoregolano l’espressione di ACE2 nei modelli murini, evidenziando l’interrelazione tra il microbioma intestinale, l’espressione di ACE2 e l’infezione virale [53]. L'effetto delle specie Firmicutes sull'espressione del recettore ACE-2 non è coerente. Tuttavia, studi recenti hanno indicato che la modulazione della composizione del microbiota intestinale aumentando l’abbondanza di Bacteroidetes e diminuendo i livelli di Firmicutes può avere un impatto benefico nell’inibire l’ingresso di SARS-CoV-2 attraverso la downregulation dell’espressione di ACE2 nell’intestino cellule epiteliali intestinali [129].

L’asse intestino-polmone è un percorso di comunicazione bidirezionale che facilita lo scambio di informazioni tra il microbiota intestinale e il sistema respiratorio [130]. Prove crescenti mostrano che il microbiota intestinale influenza la salute respiratoria, mentre il sistema respiratorio influenza la composizione del microbiota intestinale. Si ritiene che il sistema immunitario, fondamentale sia nell’intestino che nei polmoni, medi l’asse intestino-polmone, insieme all’espressione di ACE2 in entrambi gli organi [131]. Gli studi rivelano che il microbiota intestinale modula l’espressione di ACE2 nel sistema respiratorio e che il trattamento con Lactobacillus rhamnosus può aumentare l’espressione di ACE2 nei polmoni, mitigare il danno polmonare indotto dal virus dell’influenza e migliorare la funzione polmonare [132].

È stato dimostrato che vari oligosaccaridi, inclusi frutto-oligosaccaridi, xilooligosaccaridi, galattoligosaccaridi e pectina-oligosaccaridi, promuovono selettivamente la crescita di batteri intestinali benefici come bifidobatteri e lattobacilli. Questi batteri di derivazione probiotica producono molecole come lipopeptidi, tra cui la subtilisina del Bacillus amyloliquefaciens, la curvatura A del Lactobacillus curvatus, la sakacina P del Lactobacillus sake e i lattococchi Gb del Lactococcus lactis, che possiedono una maggiore affinità di legame con l’ACE2 umano [133]. Inibendo in modo competitivo l'azione di queste molecole derivate dai probiotici, viene impedita la connessione obbligatoria del SARS-CoV-2 con le cellule epiteliali dell'ospite che esprimono ACE2 per l'ingresso e la riproduzione. Inoltre, la ricerca ha dimostrato che il microbiota intestinale produce SCFA che possono influenzare l’espressione dell’ACE2 intestinale. Marrone et al. hanno dimostrato che la colonizzazione con batteri arricchiti di Clostridia ha comportato un aumento significativo del propionato e del butirrato fecali, nonché una diminuzione dell’espressione di ACE2 nell’intestino e nei polmoni di specifici topi esenti da agenti patogeni [134]. Allo stesso modo, altre ricerche hanno dimostrato che il trattamento con butirrato può ridurre l’espressione di ACE2, insieme a vari altri geni correlati alla difesa dell’ospite e alla risposta immunitaria [135]. Questi risultati suggeriscono che gli SCFA possono svolgere un ruolo nell’inibire l’ingresso di SARS-CoV-2 nelle cellule ospiti riducendo l’espressione di ACE2. Pertanto, prendere di mira e modulare il microbioma intestinale utilizzando gli oligosaccaridi potrebbe essere una potenziale strategia per ridurre i sintomi post-COVID-19.

7. Conclusioni

L'epidemia globale di COVID-19 ha avuto una profonda influenza sugli stili di vita delle persone in tutto il mondo e può causare effetti sulla salute a lungo termine, inclusa la sindrome post-COVID-19. Questa sindrome può persistere per settimane o mesi e può includere sintomi come disbiosi intestinale, diarrea, affaticamento e dolore anomalo. Le alterazioni del microbiota intestinale possono contribuire a vari sintomi gastrointestinali e ad un aumento del rischio di infezioni. Inoltre, la disbiosi nel microbiota intestinale può portare ad un aumento dell’infiammazione e dello stress ossidativo, che possono contribuire ai sintomi cronici e allo sviluppo della sindrome post-COVID-19. Pertanto, il bilanciamento del microbiota intestinale attraverso interventi dietetici, probiotici, prebiotici e trapianto di microbiota fecale è emerso come un approccio terapeutico promettente per alleviare i sintomi post-COVID-19.

La nutrizione personalizzata è un campo emergente che potrebbe offrire nuove opportunità per promuovere la salute dell'intestino nella gestione post-COVID-19. La combinazione di oligosaccaridi con altri probiotici e prebiotici potrebbe portare a miglioramenti più significativi nella salute dell’intestino e nella funzione immunitaria. Gli oligosaccaridi derivano da risorse naturali e non sono tossici, il che li rende un metodo conveniente ed economico per promuovere la salute dell’intestino e ridurre il rischio di sintomi e infezioni gastrointestinali. Possono stimolare la crescita di batteri intestinali benefici inibendo al contempo la crescita di batteri dannosi, promuovendo la produzione di metaboliti funzionali come gli acidi grassi a catena corta (SCFA). Gli SCFA hanno numerosi benefici per la salute, tra cui la modulazione immunitaria e l’antinfiammatorio. I sali biliari, un altro importante metabolita derivato dall’intestino, possono anche avere capacità antiossidanti e antinfiammatorie che possono aiutare a ridurre l’infiammazione e lo stress ossidativo. Inoltre, il microbiota intestinale e i recettori ACE2 svolgono un ruolo cruciale nella patogenesi del COVID-19 e possono anche essere implicati nello sviluppo della sindrome post-COVID-19. Gli oligosaccaridi possono modulare la flora intestinale e l'espressione di ACE2 nell'intestino, evidenziando la potenziale importanza della modulazione del microbiota intestinale nella gestione dei sintomi post-COVID-19.

Tuttavia, sono necessarie ulteriori ricerche per determinare il dosaggio e i tempi ottimali dell'integrazione di oligosaccaridi nella gestione post-COVID-19. Inoltre, è essenziale considerare la fonte e il tipo di oligosaccaride, poiché tipi diversi possono avere effetti diversi sul microbiota intestinale. La ricerca futura dovrebbe concentrarsi sull’identificazione degli oligosaccaridi specifici più efficaci nel promuovere la salute dell’intestino. In conclusione, gli oligosaccaridi sono potenziali regolatori del microbiota intestinale e della salute intestinale nella gestione post-COVID-19.

Contributi dell'autore:Concettualizzazione, SZ e KT; scrittura: preparazione della bozza originale, K.-LC; acquisizione di finanziamenti, SZ e K.-LC; scrittura: revisione e editing, K.-LC, SC, BT, SV, SZ e KT Tutti gli autori hanno letto e accettato la versione pubblicata del manoscritto.

Finanziamento:Questo lavoro è stato sostenuto in parte dal Programma di ricerca e sviluppo in aree chiave della provincia di Guangdong (2020B1111030004), dal Programma di team innovativi di istruzione superiore della provincia di Guangdong (2021KCXTD021) e dal Programma per i fondi di avvio della ricerca scientifica della Guangdong Ocean University ( 2023).

Dichiarazione del comitato di revisione istituzionale:Non applicabile.

Dichiarazione di consenso informato:Non applicabile.

Dichiarazione sulla disponibilità dei dati:Non applicabile.

Conflitto di interessi:Gli autori dichiarano assenza di conflitto di interesse.

Riferimenti

1. Yang, X.; Yu, Y.; Xu, J.; Shu, H.; Xia, JA; Liu, H.; Wu, Y.; Zhang, L.; Yu, Z.; Zanna, M.; et al. Decorso clinico ed esiti di pazienti critici con polmonite da SARS-CoV-2 a Wuhan, Cina: uno studio osservazionale monocentrico, retrospettivo. Lancetta Resp. Med. 2020, 8, 475–481. [CrossRef] [PubMed]

2. Tang, JW; Bahnfleth, WP; Bluyssen, primo ministro; Buonanno, G.; Jimenez, JL; Kurnitski, J.; Li, Y.; Miller, S.; Sekhar, C.; Morawska, L.; et al. Smantellamento dei miti sulla trasmissione aerea della sindrome respiratoria acuta grave coronavirus-2 (SARS-CoV-2). J.Hosp. Infettare. 2021, 110, 89–96. [CrossRef] [PubMed]

3. Liu, J.; Li, Y.; Liu, Q.; Yao, D.; Wang, X.; Zhang, H.; Chen, R.; Ren, L.; Min, J.; Deng, F.; et al. Tropismo cellulare SARS-CoV-2 e infezione multiorgano. Cella Scov. 2021, 7, 17. [CrossRef] [PubMed]

4. Wu, X.; Jing, H.; Wang, C.; Wang, Y.; Zuo, N.; Jiang, T.; Novakovic, Virginia; Shi, J. Danno intestinale in COVID-19: infezione da SARS-CoV-2 e trombosi intestinale. Davanti. Microbiolo. 2022, 13, 860931. [RifCroce]

5. Nalbandian, A.; Sehgal, K.; Gupta, A.; Madhavan, MV; McGroder, C.; Stevens, JS; Cuoco, JR; Nordvig, AS; Shalev, D.; Sehrawat, Texas; et al. Sindrome COVID-19 post-acuta. Naz. Med. 2021, 27, 601–615. [RifCroce]

6. Truffatore, H.; Raza, S.; Nowell, J.; Giovane, M.; Edison, P. Long Covid: meccanismi, fattori di rischio e gestione. BMJ 2021, 374, n1648. [RifCroce]

7.Raveendran, AV; Jayadevan, R.; Sashidharan, S. Long COVID: una panoramica. Metab. del diabete Sindaco. 2021, 15, 869–875. [RifCroce]

8. Naveed, M.; Phil, L.; Sohail, M.; Hasnat, M.; Baig, MMFA; Ihsan, AU; Shumzaid, M.; Kakar, MU; Mehmood Khan, T.; Akabar, MD; et al. Oligosaccaride di chitosano (COS): una panoramica. interno J. Biol. Macromol. 2019, 129, 827–843. [CrossRef] [PubMed]

9. de Moura, FA; Macagnan, FT; da Silva, LP Produzione di oligosaccaridi mediante idrolisi di polisaccaridi: una revisione. interno J.Scienze Alimentari. Tecnologia. 2015, 50, 275–281. [RifCroce]

10. Xie, X.-T.; Cheong, K.-L. Recenti progressi negli oligosaccaridi delle alghe marine: struttura, analisi e potenziali attività prebiotiche. Critico. Rev. Scienze Alimentari. Nutr. 2022, 62, 7703–7717. [CrossRef] [PubMed]

11. Wang, M.; Veeraperumal, S.; Zhong, S.; Cheong, K.-L. Oligosaccaridi funzionali derivati ​​dal fucoidano: sviluppi recenti, preparazione e potenziali applicazioni. Alimenti 2023, 12, 878. [CrossRef] [PubMed]

12. Moreno, FJ; Corzo, N.; Montilla, A.; Villamiel, M.; Olano, A. Stato attuale e ultimi progressi nel concetto, produzione e funzionalità degli oligosaccaridi prebiotici. Curr. Opinione. Scienza dell'alimentazione 2017, 13, 50–55. [RifCroce]

13. Guo, Z.; Wei, Y.; Zhang, Y.; Xu, Y.; Zheng, L.; Zhu, B.; Yao, Z. Oligosaccaridi della carragenina: una revisione completa di preparazione, isolamento, purificazione, struttura, attività biologiche e applicazioni. Ricerca sulle alghe 2022, 61, 102593. [CrossRef]

14. Yu, B.; Wang, M.; Teng, B.; Veeraperumal, S.; Cheung, PC-K.; Zhong, S.; Cheong, K.-L. La porfirina parzialmente idrolizzata con acido ha migliorato la colite acuta indotta da destrano solfato di sodio modulando il microbiota intestinale e migliorando la barriera della mucosa. J. Agric. Cibo. Chimica. 2023, 71, 7299–7311. [CrossRef] [PubMed]

15. Zhang, N.; Jin, M.; Wang, K.; Zhang, Z.; Shah, NP; Wei, H. Fermentazione funzionale degli oligosaccaridi nell'intestino: miglioramento della salute intestinale e dei suoi fattori determinanti: una revisione. Carboidrati Polim. 2022, 284, 119043. [CrossRef] [PubMed]

16. Cheong, K.-L.; Li, J.-K.; Zhong, S. Preparazione e caratterizzazione della struttura degli oligosaccaridi di Laminaria digitata di alto valore. Davanti. Nutr. 2022, 9, 945804. [CrossRef] [PubMed]

17. Wang, T.; Tao, Y.; Lai, C.; Huang, C.; Ling, Z.; Yong, Q. Influenza della composizione glicosilica sull'attività immunologica della pectina e dell'oligosaccaride derivato dalla pectina. interno J. Biol. Macromol. 2022, 222, 671–679. [CrossRef] [PubMed]

18. Bi, D.; Yang, X.; Lu, J.; Xu, X. Preparazione e potenziali applicazioni di oligosaccaridi alginati. Critico. Rev. Scienze Alimentari. Nutr. 2022, 26, 1–18.

19. Zheng, L.-X.; Liu, Y.; Tang, S.; Zhang, W.; Cheong, K.-L. Metodi di preparazione, attività biologiche e potenziali applicazioni degli oligosaccaridi delle alghe marine: una revisione. Scienza dell'alimentazione Ronzio. BENE. 2023, 12, 359–370. [RifCroce]

20. Revisione contabile, GY; Wang, K.; Viveiros, A.; Kellner, MJ; Penninger, JM Enzima di conversione dell'angiotensina 2-al centro della pandemia di COVID-19. Cella 2023, 186, 906–922. [RifCroce]

21. Behl, T.; Kaur, I.; Bungau, S.; Kumar, A.; Uddin, MS; Kumar, C.; Pal, G.; Sahil; Shrivastava, K.; Zengin, G.; et al. Il duplice impatto di ACE2 nel COVID-19 e azioni ironiche in geriatria e pediatria con possibili soluzioni terapeutiche. Scienza della vita. 2020, 257, 118075. [CrossRef] [PubMed]

22. Bourgonje, AR; Abdulle, AE; Times, W.; Hillebrands, J.-L.; Navis, GJ; Gordijn, SJ; Bolling, MC; Dijkstra, G.; Bene, AA; Osterhaus, AD; et al. Enzima di conversione dell'angiotensina 2 (ACE2), SARS-CoV-2 e fisiopatologia della malattia da coronavirus 2019 (COVID-19). J. Pathol. 2020, 251, 228–248. [CrossRef] [PubMed]

23. Zhang, H.; Li, H.-B.; Lyu, J.-R.; Lei, X.-M.; Li, W.; Wu, G.; Lyu, J.; Dai, Z.-M. L’espressione specifica di ACE2 negli enterociti dell’intestino tenue può causare sintomi gastrointestinali e lesioni dopo l’infezione da 2019-nCoV. interno J. Infettare. Dis. 2020, 96, 19–24. [RifCroce]

24. Fodor, A.; Tiperciuc, B.; Accesso, C.; Orasan, Ohio; Lazar, AL; Buchmann, C.; Hanghicel, P.; Sitar-Taut, A.; Suharoschi, R.; Vulturar, R.; et al. Disfunzione endoteliale, infiammazione e stress ossidativo nel COVID-19—Meccanismi e bersagli terapeutici. Ossido. Med. Cella Longev. 2021, 2021, 8671713. [RifCroce]

25. Freire, deputato; Oliveira, MS; Magri, MMC; Tavares, BM; Marinho, I.; Nastri, ACDSS; Filo, GB; Levin, AS Frequenza e fattori associati alla riammissione in ospedale dopo il ricovero per COVID-19: l'importanza della diarrea post-COVID. Cliniche 2022, 77, 100061. [CrossRef]

26. Alharbi, Kansas; Singh, Y.; Hassan almalki, W.; Rawat, S.; Afzal, O.; Alfawaz Altamimi, AS; Kazmi, I.; Al-Abbasi, FA; Alzarea, SI; Singh, SK; et al. Interruzione del microbiota intestinale nell'associazione di malattie COVID-19 o post-COVID con biomarcatori di gravità: un possibile ruolo dei pre/probiotici nella manipolazione della microflora. Chimica. Biol. Interagire. 2022, 358, 109898. [CrossRef]

27. Cardatura, S.; Verbeke, K.; Vipond, DT; Corfè, BM; Owen, LJ Disbiosi del microbiota intestinale nella malattia. Microbo. Eco. Salute Dis. 2015, 26, 26191. [CrossRef] [PubMed]

28. Sì, YK; Zuo, T.; Lui, GC-Y.; Zhang, F.; Liu, Q.; Li, AYL; Chung, ACK; Cheung, CP; Tso, EYK; Fung, KSC; et al. La composizione del microbiota intestinale riflette la gravità della malattia e le risposte immunitarie disfunzionali nei pazienti con COVID-19. Gut 2021, 70, 698. [CrossRef]

29. Siah, KTH; Mahadeva, S. Disturbi gastrointestinali funzionali post-COVID-19: prepararsi per una scossa di assestamento gastrointestinale. J. Gastroenterolo. Epatolo. 2022, 37, 413–414. [RifCroce]

30. Bansal, R.; Gubbi, S.; Koch, CA COVID-19 e sindrome da stanchezza cronica: una prospettiva endocrina. J. Clin. Trad. Endocr. 2022, 27, 100284. [CrossRef]

31. Ceban, F.; Ling, S.; Lui, LMW; Lee, Y.; Gill, H.; Teopiz, KM; Rodrigues, N.B.; Subramaniapillai, M.; Di Vincenzo, JD; Cao, B.; et al. Affaticamento e deterioramento cognitivo nella sindrome post-COVID-19: una revisione sistematica e una meta-analisi. Comportamento cerebrale. Immuni. 2022, 101, 93–135. [CrossRef] [PubMed]

32.François, IEJA; Lescroart, O.; Veraverbeke, WS; Windey, K.; Verbeke, K.; Broekaert, Tolleranza WF e l'effetto di alte dosi di estratto di crusca di frumento, contenente arabinoxilano-oligosaccaridi e oligofruttosio sulla produzione fecale: uno studio crossover in doppio cieco, randomizzato, controllato con placebo. J. Nutr. Sci. 2014, 3, e49. [CrossRef] [PubMed]

33. Pansai, N.; Detarun, P.; Chinnaworn, A.; Sangsupawanich, P.; Wichienchot, S. Effetti degli oligosaccaridi del frutto del drago sull'immunità, sul microbioma intestinale e sui loro metaboliti in adulti sani: uno studio randomizzato in doppio cieco controllato con placebo. Ris. Alimentare interno 2023, 167, 112657. [CrossRef] [PubMed]

34. Faber, WXM; Nachtegaal, J.; Stolwijk-Swuste, JM; Achterberg-Warmer, WJ; Koning, CJM; Besseling-van der Vaart, I.; van Bennekom, CAM Protocollo di studio di uno studio randomizzato in doppio cieco, controllato con placebo, sull'effetto di un probiotico multispecie sull'incidenza della diarrea associata agli antibiotici in persone con lesioni del midollo spinale. Midollo spinale 2020, 58, 149–156. [RifCroce]

35. Velayati, A.; Kareem, I.; Sedaghat, M.; Sohrab, G.; Nikpayam, O.; Hedayati, M.; Abhari, K.; Hejazi, E. L'integrazione simbiotica che contiene Bacillus Coagulans Lactobacillus rhamnosus, Lactobacillus acidophilus e fruttooligosaccaride ha effetti preferiti nei pazienti con diabete di tipo-2? Uno studio randomizzato, in doppio cieco, controllato con placebo. Arco. Fisiolo. Biochimica. 2021, 1–8. [RifCroce]

36. Buigues, C.; Fernández-Garrido, J.; Pruimboom, L.; Hoogland, AJ; Navarro-Martínez, R.; Martínez-Martínez, M.; Verdejo, Y.; Mascarós, MC; Peris, C.; Cauli, O. Effetto di una formulazione prebiotica sulla sindrome di fragilità: uno studio clinico randomizzato in doppio cieco. interno J.Mol. Sci. 2016, 17, 932. [CrossRef]

37. Neyrinck, AM; Rodríguez, J.; Taminiau, B.; Amadieu, C.; Herpin, F.; Allaert, F.-A.; Cani, PD; Daube, G.; Bindel, LB; Delzenne, NM Miglioramento del disagio gastrointestinale e dello stato infiammatorio da parte di un simbiotico negli adulti di mezza età: uno studio randomizzato in doppio cieco controllato con placebo. Sci. Rep. 2021, 11, 2627. [CrossRef]

38. Vulevic, J.; Tzortzis, G.; Juric, A.; Gibson, GR Effetto di una miscela prebiotica di galattooligosaccaridi (B-GOS®) sui sintomi gastrointestinali negli adulti selezionati da una popolazione generale che soffre di gonfiore, dolore addominale o flatulenza. Neurogastroenterolo. Motile. 2018, 30, e13440. [RifCroce]

39. Mego, M.; Manichanh, C.; Accarino, A.; Campos, D.; Pozuelo, M.; Varela, E.; Vulevic, J.; Tzortzis, G.; Gibson, G.; Guarner, F.; et al. Adattamento metabolico del microbiota del colon ai galattooligosaccaridi: uno studio dimostrativo. Alimentare. Farmaco. Là. 2017, 45, 670–680. [RifCroce]

40. Depeint, F.; Tzortzis, G.; Vulevic, J.; I'Anson, K.; Gibson, GR Valutazione prebiotica di una nuova miscela di galattooligosaccaridi prodotta dall'attività enzimatica del Bifidobacterium bifidum NCIMB 41171, in esseri umani sani: uno studio di intervento randomizzato, in doppio cieco, crossover, controllato con placebo. Sono. J. Clin. Nutr. 2008, 87, 785–791. [RifCroce]

41. Childs, CE; Röytiö, H.; Alhoniemi, E.; Fekete, AA; Forssten, SD; Hudjec, N.; Lim, YN; Steger, CJ; Yaqoob, P.; Tuohy, KM; et al. Xilo-oligosaccaridi da soli o in combinazione simbiotica con Bifidobacterium animalis subsp. lactis inducono la bifidogenesi e modulano i marcatori della funzione immunitaria negli adulti sani: uno studio cross-over fattoriale in doppio cieco, controllato con placebo, randomizzato. Fratello J. Nutr. 2014, 111, 1945–1956. [PubMed]

42. Monira, S.; Nakamura, S.; Gotoh, K.; Izutsu, K.; Watanabe, H.; Alam, NH; Nakaya, T.; Horii, T.; Ali, SI; Iida, T.; et al. Profilo metagenomico del microbiota intestinale nei bambini durante il colera e il recupero. Pathog intestinale. 2013, 5, 1. [CrossRef] [PubMed]

43. Kau, AL; Ahern, PP; Griffin, nord-ovest; Goodman, AL; Gordon, JI Nutrizione umana, microbioma intestinale e sistema immunitario. Natura 2011, 474, 327–336. [RifCroce]

44. Luo, J.; Liang, S.; Jin, F. Il microbiota intestinale nella strategia antivirale dai pipistrelli all'uomo: un anello mancante nel COVID-19. Sci. Cina Vita Sci. 2021, 64, 942–956. [CrossRef] [PubMed]

45. Zhang, X.; Chen, B.-D.; Zhao, L.-D.; Li, H. Il microbiota intestinale: prove emergenti nelle malattie autoimmuni. Tendenze Mol. Med. 2020, 26, 862–873. [RifCroce]

46. ​​Cantorna, MT; Snyder, L.; Arora, J. Vitamina A e vitamina D regolano la complessità microbica, la funzione barriera e le risposte immunitarie delle mucose per garantire l'omeostasi intestinale. Critico. Rev. Biochimica. Mol. Biol. 2019, 54, 184–192. [RifCroce]

47. Troseid, M.; Holter, JC; Holm, K.; Vestad, B.; Sazonova, T.; Granerud, BK; Dyrhol-Riise, AM; Holten, AR; Tonby, K.; Kildal, AB; et al. La composizione del microbiota intestinale durante il ricovero è associata alla mortalità di 60-giorni dopo COVID grave-19. Critico. Cura 2023, 27, 69. [CrossRef]

48. Liu, D.; Mak, JWY; Su, Q.; Sì, YK; Lui, GC-Y.; Ng, SSS; Zhang, F.; Li, AYL; Lu, W.; Hui, DS-C.; et al. Dinamica del microbiota intestinale in una potenziale coorte di pazienti con sindrome COVID-19 post-acuta. Gut 2022, 71, 544. [CrossRef]

49. Xie, X.-T.; Zheng, L.-X.; Duan, H.-M.; Liu, Y.; Chen, X.-Q.; Cheong, K.-L. Caratteristiche strutturali degli oligosaccaridi di Gracilaria lemaneiformis e loro alleviamento della colite indotta da destrano solfato di sodio modulando il microbiota intestinale e i metaboliti intestinali nei topi. Funzione alimentare. 2021, 12, 8635–8646. [RifCroce]

50. Zhang, X.; Aweya, JJ; Huang, Z.-X.; Kang, Z.-Y.; Bai, Z.-H.; Li, K.-H.; Lui, X.-T.; Liu, Y.; Chen, X.-Q.; Cheong, K.-L. Fermentazione in vitro dei polisaccaridi solfati di Gracilaria lemaneiformis e dei suoi agar-oligosaccaridi mediante inoculi fecali umani e suo impatto sul microbiota. Carboidrati Polim. 2020, 234, 115894. [CrossRef]

51. Zhang, X.; Liu, Y.; Chen, X.-Q.; Aweya, JJ; Cheong, K.-L. Catabolismo dei polisaccaridi e degli oligosaccaridi della Saccharina japonica da parte del microbiota fecale umano. LWT 2020, 130, 109635. [CrossRef]

52. Wang, Y.; Li, N.; Yang, J.-J.; Zhao, D.-M.; Chen, B.; Zhang, G.-Q.; Chen, S.; Cao, R.-F.; Yu, H.; Zhao, C.-Y.; et al. L'intervento di probiotici e frutto-oligosaccaridi modula l'asse microbiota-intestino per migliorare lo spettro autistico riducendo lo stato iper-serotonergico e il disturbo del metabolismo della dopamina. Farmaco. Ris. 2020, 157, 104784. [CrossRef]

53. Zuo, T.; Zhang, F.; Lui, GCY; Sì, YK; Li, AYL; Zhan, H.; Wan, Y.; Chung, ACK; Cheung, CP; Chen, N.; et al. Alterazioni del microbiota intestinale dei pazienti affetti da COVID-19 durante il periodo di ricovero ospedaliero. Gastroenterologia 2020, 159, 944–955.e8. [CrossRef] [PubMed]

54. Wardman, JF; Bains, RK; Rahfeld, P.; Withers, SG Enzimi attivi nei carboidrati (CAZymes) nel microbioma intestinale. Naz. Rev. Microbiol. 2022, 20, 542–556. [CrossRef] [PubMed]

55. Hao, Z.; Wang, X.; Yang, H.; Tu, T.; Zhang, J.; Luo, H.; Huang, H.; Su, X. Utilizzo dei polisaccaridi della parete cellulare mediata da PUL nell'intestino Bacteroidetes. interno J.Mol. Sci. 2021, 22, 3077. [CrossRef]

56. Zafar, H.; Saier, MH Gut Bacteroides specie in salute e malattia. Microbi intestinali 2021, 13, 1848158. [CrossRef]

57. Mulini, destra; Dulai, PS; Vázquez-Baeza, Y.; Sauceda, C.; Daniele, N.; Gerner, RR; Batachari, LE; Malfavon, M.; Zhu, Q.; Weldon, K.; et al. Analisi multi-omiche del microbioma intestinale della colite ulcerosa collegano le proteasi del Bacteroides vulgatus con la gravità della malattia. Naz. Microbiolo. 2022, 7, 262–276. [RifCroce]

58. Yang, JY; Lee, YS; Kim, Y.; Lee, SH; Ryu, S.; Fukuda, S.; Hase, K.; Yang, CS; Lim, HS; Kim, MS; et al. Il commensale intestinale Bacteroides acidifaciens previene l'obesità e migliora la sensibilità all'insulina nei topi. Immunolo della mucosa. 2017, 10, 104–116. [RifCroce]

59. Boll, EVJ; Ekstrom, LMNK; Courtin, CM; Delcour, JA; Nilsson, AC; Bjorck, IME; Östman, EM Effetti dell'estratto di crusca di frumento ricco di oligosaccaridi arabinoxilani e amido resistente sulla tolleranza al glucosio durante la notte e marcatori di fermentazione intestinale in giovani adulti sani. Euro. J. Nutr. 2016, 55, 1661–1670. [RifCroce]

60. Cheong, K.-L.; Yu, B.; Chen, J.; Zhong, S. Una revisione completa dell'effetto cardioprotettivo del polisaccaride delle alghe marine sul microbiota intestinale. Alimenti 2022, 11, 3550. [CrossRef]

61. Desai, MS; Seekatz, AM; Koropatkin, Nuovo Messico; Kamada, N.; Hickey, California; Wolter, M.; Pudlo, Carolina del Nord; Kitamoto, S.; Terrapina, N.; Muller, A.; et al. Un microbiota intestinale privo di fibre alimentari degrada la barriera del muco del colon e aumenta la suscettibilità agli agenti patogeni. Cella 2016, 167, 1339–1353.e21. [CrossRef] [PubMed]

62. Schwalm, North Carolina; Groisman, EA Navigare nel buffet intestinale: controllo dell'utilizzo dei polisaccaridi in Bacteroides spp. Tendenze Microbiol. 2017, 25, 1005–1015. [CrossRef] [PubMed]

63. Vulevic, J.; Juric, A.; Walton, GE; Claus, SP; Tzortzis, G.; Verso, RE; Gibson, GR Influenza della miscela di galatto-oligosaccaridi (B-GOS) sul microbiota intestinale, sui parametri immunitari e sulla metabonomica negli anziani. Fratello J. Nutr. 2015, 114, 586–595. [CrossRef] [PubMed]

64. Bindel, LB; Neyrinck, AM; Salazar, N.; Taminiau, B.; Druart, C.; Muccioli, GG; François, E.; Blecker, C.; Richel, A.; Daube, G.; et al. Gli oligosaccaridi non digeribili modulano il microbiota intestinale per controllare lo sviluppo della leucemia e della cachessia associata nei topi. PLoS ONE 2015, 10, e0131009. [RifCroce]

65. Sikalidis, AK; Maykish, A. Il microbioma intestinale e il diabete mellito di tipo 2: discutere di una relazione complessa. Biomedicina 2020, 8, 8. [CrossRef]

66.Gomes, AC; Hoffmann, C.; Mota, JF Il microbiota intestinale umano: metabolismo e prospettiva nell'obesità. Microbi intestinali 2018, 9, 308–325. [RifCroce]

67. Reinold, J.; Farahpour, F.; Fehring, C.; Dolff, S.; Konik, M.; Korth, J.; van Baal, L.; Hoffmann, D.; Buer, J.; Witzke, O.; et al. Un microbioma intestinale proinfiammatorio caratterizza i pazienti infetti da SARS-CoV-2 e una riduzione della connettività di una rete batterica antinfiammatoria si associa a una forma grave di COVID-19. Davanti. Infettare le cellule. Mi. 2021, 11, 747816. [CrossRef]

68. Lindstad, LJ; Tronco d'albero.; Leivers, S.; Lu, Z.; Michalak, L.; Pereira, GV; Røhr, Å.K.; Martens, CE; McKee, LS; Luigi, P.; et al. L'intestino umano Faecalibacterium prausnitzii utilizza un sistema conservato altamente efficiente per l'alimentazione incrociata di oligosaccaridi derivati ​​​​dal mannano. mBio 2021, 12, e03628-20. [RifCroce]

69. Turroni, F.; Milani, C.; Duranti, S.; Mahony, J.; van Sinderen, D.; Ventura, utilizzo di M. Glycan e attività di alimentazione incrociata da parte dei bifidobatteri. Tendenze Microbiol. 2018, 26, 339–350. [RifCroce]

70. Leth, ML; Ejby, M.; Operaio, C.; Ewald, DA; Pedersen, SS; Sternberg, C.; Bahl, MI; Luce, TR; Aachmann, FL; Westereng, B.; et al. Le preferenze differenziali di cattura e trasporto batterico facilitano la co-crescita dello xilano alimentare nell’intestino umano. Naz. Microbiolo. 2018, 3, 570–580. [RifCroce]

71. Maria, PR; Kapoor, M. Le fermentazioni in co-coltura suggeriscono l'alimentazione incrociata tra Bacteroides ovatus DSMZ 1896, Lactiplantibacillus plantarum WCFS1 e Bifidobacterium adolescentis DSMZ 20083 per l'utilizzo di galattomannani dietetici. Ris. Alimentare interno 2022, 162, 111942. [CrossRef] [PubMed]

72. Wang, M.; Cheong, K.-L. Preparazione, caratterizzazione strutturale e bioattività dei fruttani: una revisione. Molecole 2023, 28, 1613. [CrossRef] [PubMed]

73. Yao, W.; Gong, Y.; Li, L.; Hu, X.; Tu, L. Gli effetti delle fibre alimentari della crusca di riso e della crusca di frumento sul microbiota intestinale: una panoramica. Chimica degli alimenti. X 2022, 13, 100252. [CrossRef]

74. Hu, J.; Lin, S.; Zheng, B.; Cheung, PCK Acidi grassi a catena corta nel controllo del metabolismo energetico. Critico. Rev. Scienze Alimentari. Nutr. 2018, 58, 1243–1249. [CrossRef] [PubMed]

75. Martin-Gallausiaux, C.; Marinelli, L.; Blottière, HM; Larraufie, P.; Lapaque, N. SCFA: Meccanismi e importanza funzionale nell'intestino. Proc. Nutr. Soc. 2020, 80, 37–49. [RifCroce]

76. Dalile, B.; Van Oudenhove, L.; Vervliet, B.; Verbeke, K. Il ruolo degli acidi grassi a catena corta in una comunicazione microbiota-intestino-cervello. Naz. Rev. Gastro. Epatite. 2019, 16, 461–478. [RifCroce]

77. Yao, Y.; Cai, X.; Fei, W.; Sì, Y.; Zhao, M.; Zheng, C. Il ruolo degli acidi grassi a catena corta nell'immunità, nell'infiammazione e nel metabolismo. Critico. Rev. Scienze Alimentari. Nutr. 2022, 62, 1–12. [RifCroce]

78. Zhang, F.; Wan, Y.; Zuo, T.; Sì, YK; Liu, Q.; Zhang, L.; Zhan, H.; Lu, W.; Xu, W.; Lui, GCY; et al. Compromissione prolungata della biosintesi degli acidi grassi a catena corta e della L-isoleucina nel microbioma intestinale in pazienti con COVID-19. Gastroenterologia 2022, 162, 548–561.e4. [RifCroce]

79. Giovanni, M.; Cesare, C.; Maria Raffaella, B.; Giulia, C.; Francesca, F.; Anna, K.; Dmitrij, B.; Vasile, D.; Egidia, M.; Pietro, F.; et al. Sindrome dell'intestino irritabile post-COVID-19. Gut 2023, 72, 484.

80. Zhang, F.; Lau, RI; Liu, Q.; Su, Q.; Chan, FKL; Ng, SC Gut microbiota in COVID-19: principali cambiamenti microbici, potenziali meccanismi e applicazioni cliniche. Naz. Rev. Gastro. Epatite. 2022, 20, 323–337. [RifCroce]

81. Hotchkiss, AT; Renye, JA; Bianco, AK; Núñez, A.; Guron, GKP; Chau, H.; Simone, S.; Poveda, C.; Walton, G.; Rastall, R.; et al. Gli oligosaccaridi pectici e arabino-xiloglucani del mirtillo rosso inducono la crescita dei lactobacilli e la produzione di acidi grassi a catena corta. Microrganismi 2022, 10, 1346. [CrossRef]

82. Godínez-Méndez, LA; Gurrola-Díaz, CM; Zepeda-Nuño, JS; Vega-Magaña, N.; Lopez-Roa, RI; Íñiguez-Gutierrez, L.; García López, Primo Ministro; Fafutis-Morris, M.; Delgado-Rizo, V. Benefici salutari in vivo dei galattoligosaccaridi di Lupinus albus (LA-GOS) nella produzione di butirrato attraverso il microbiota intestinale. Biomolecole 2021, 11, 1658. [CrossRef]

83. Haase, S.; Haghikia, A.; Wilck, N.; Müller, DN; Linker, RA Impatti dei metaboliti del microbioma sulla regolazione immunitaria e sull’autoimmunità. Immunologia 2018, 154, 230–238. [CrossRef] [PubMed]

84. Abdulkarim Jasim, S.; Giada Catalana Opulencia, M.; Alexis Ramírez-Coronel, A.; Kamal Abdelbasset, W.; Hasan Abed, M.; Markov, A.; Raheem Lateef Al-Awsi, G.; Azamatovich Shamsiev, J.; Thaer Hammid, A.; Nader Shalaby, M.; et al. Il ruolo emergente degli acidi grassi a catena corta derivati ​​dal microbiota nell’immunometabolismo. interno Immunofarmacolo. 2022, 110, 108983. [CrossRef] [PubMed]

85. Qiu, J.; Villa, M.; Sanin, DE; Buck, medico; O'Sullivan, D.; Ching, R.; Matsushita, M.; Grzes, KM; Winkler, F.; Chang, C.-H.; et al. L’acetato promuove la funzione effettrice delle cellule T durante la restrizione del glucosio. Rappresentante cellulare 2019, 27, 2063–2074.e5. [CrossRef] [PubMed]

86. Yong, SJ Long COVID o sindrome post-COVID-19: fisiopatologia putativa, fattori di rischio e trattamenti. Infettare. Dis. 2021, 53, 737–754. [RifCroce]

87. Andrade, MER; Trindade, LM; Leocadio, PCL; Leite, JIA; dos Reis, DC; Cassali, GD; da Silva, TF; de Oliveira Carvalho, RD; de Carvalho Azevedo, VA; Cavalcante, GG; et al. L'associazione di frutto-oligosaccaridi e arginina migliora la gravità delle mucositi e modula il microbiota intestinale. Probiotici Antimicrobici. Proteine ​​2023, 15, 424–440. [RifCroce]

88. Trompette, A.; Gollwitzer, ES; Pattaroni, C.; Lopez-Mejia, IC; Riva, E.; Pernot, J.; Ubags, N.; Fajas, L.; Nicod, LP; Marsland, BJ La fibra alimentare conferisce protezione contro l'influenza modellando Ly6c-pattugliando l'ematopoiesi dei monociti e il metabolismo delle cellule T CD8+. Immunità 2018, 48, 992–1005.e8. [RifCroce]

89. Xu, J.; Wang, R.; Liu, W.; Yin, Z.; Wu, J.; Yu, X.; Wang, W.; Zhang, H.; Li, Z.; Gao, M.; et al. La specificità di dieci carboidrati non digeribili per migliorare i batteri produttori di butirrato e la produzione di butirrato nella fermentazione in vitro. Scienza dell'alimentazione Ronzio. BENE. 2023, 12, 2344–2354. [RifCroce]

90. Guo, C.; Che, X.; Briese, T.; Ranjan, A.; Allicock, O.; Yates, RA; Cheng, A.; Marzo, D.; Hornig, M.; Komaroff, AL Una carenza di capacità di produzione di butirrato nel microbioma intestinale è associata a disturbi della rete batterica e sintomi di affaticamento nella ME/CFS. Microbo ospite della cellula 2023, 31, 288–304.e8. [RifCroce]

91. Zhang, D.; Zhou, Y.; Maggio.; Chen, P.; Tang, J.; Yang, B.; Li, H.; Liang, M.; Xue, Y.; Liu, Y.; et al. La disbiosi del microbiota intestinale è correlata al COVID lungo-19 un anno dopo la dimissione. J. Med coreano. Sci. 2023, 38, 1516082546. [CrossRef]

92. Xie, Q.; Sole, Y.; Cao, L.; Chen, L.; Chen, J.; Cheng, X.; Wang, C. Attività antifatica e antiipossia di oligosaccaridi e polisaccaridi di Codonopsis pilosula nei topi. Funzione alimentare. 2020, 11, 6352–6362. [CrossRef] [PubMed]

93. Zhuang, Y.; Zeng, R.; Liu, X.; Yang, L.; Chan, Z. I neoagaro-oligosaccaridi migliorano la depressione cronica indotta dallo stress aumentando 5-HT e BDNF nel cervello e rimodellando il microbiota intestinale dei topi. Farmaci marzo 2022, 20, 725. [CrossRef] [PubMed]

94. Barrea, L.; Concedere, WB; Frias-Toral, E.; Vetrani, C.; Verde, L.; de Alteriis, G.; Docimo, A.; Savastano, S.; Colao, A.; Muscogiuri, G. Raccomandazioni dietetiche per la sindrome post-COVID-19. Nutrienti 2022, 14, 1305. [CrossRef]

95. Hu, Y.-C.; Hu, J.-L.; Li, J.; Wang, J.; Zhang, X.-Y.; Wu, X.-Y.; Li, X.; Guo, Z.-B.; Zou, L.; Wu, D.-T. Caratteristiche fisico-chimiche e attività biologiche delle fibre alimentari solubili isolate dalle foglie di diverse cultivar di quinoa. Ris. Alimentare interno 2023, 163, 112166. [CrossRef]

96. Barrea, L.; Vetrani, C.; Caprio, M.; Cataldi, M.; Goch, io; Elce, A.; Camajani, E.; Verde, L.; Savastano, S.; Colao, A.; et al. Dalla dieta chetogenica alla dieta mediterranea: la potenziale terapia dietetica nei pazienti con obesità dopo l'infezione da COVID-19 (sindrome post COVID). Curr. Obes. Rep. 2022, 11, 144–165. [CrossRef] [PubMed]

97. Pandey, M.; Bhati, A.; Priya, K.; Sharma, KK; Singhal, B. Postbiotici di precisione e salute mentale: la gestione delle complicazioni postCOVID-19. Probiotici Antimicrobici. Proteine ​​2022, 14, 426–448. [CrossRef] [PubMed]

98. Buffie, CG; Bucci, V.; Stein, RR; McKenney, PT; Ling, L.; Gobourne, A.; Cenno.; Liu, H.; Kinnebrew, M.; Viale, A.; et al. La ricostituzione precisa del microbioma ripristina la resistenza mediata dagli acidi biliari al Clostridium difficile. Natura 2015, 517, 205–208. [RifCroce]

99. Henri, D.; Sylvie, R.; Domenico, R.; Davide, B.; Marie-Anne, M.; Elodie, Q.; Ginette, T.; Veronica, B.; Lydie, H.; Guillaume, D.; et al. Collegamento di disbiosi, dismetabolismo degli acidi biliari e infiammazione intestinale nelle malattie infiammatorie intestinali. Gut 2013, 62, 531.

100. Ward, JBJ; Lajczak, Carolina del Nord; Kelly, OB; O'Dwyer, AM; Giddam, AK; Gabhann, JN; Franco, P.; Tambuwala, MM; Jefferies, California; Keely, S.; et al. L'acido ursodesossicolico e l'acido litocolico esercitano un'azione antinfiammatoria nel colon. Sono. J. Physiol.-Gastrointest. Fisiolo del fegato. 2017, 312, G550–G558. [RifCroce]

101. Singh, N.; Gurav, A.; Sivaprakasam, S.; Brady, E.; Padia, R.; Shi, H.; Thangaraju, M.; Prasad, PD; Manicassamy, S.; Munn, DH; et al. L'attivazione di Gpr109a, il recettore della niacina e del metabolita commensale butirrato, sopprime l'infiammazione del colon e la carcinogenesi. Immunità 2014, 40, 128–139. [CrossRef] [PubMed]

102. Braniste, V.; Al-Asmakh, M.; Kowal, C.; Anuar, F.; Abbaspour, A.; Toth, M.; Korecka, A.; Bakocevic, N.; Ng, LG; Kundu, P.; et al. Il microbiota intestinale influenza la permeabilità della barriera ematoencefalica nei topi. Sci. Trad. Med. 2014, 6, 263ra158. [CrossRef] [PubMed]

103. Erny, D.; Hrabˇe de Angelis, AL; Jaitin, D.; Wieghofer, P.; Staszewski, O.; Davide.; Keren-Shaul, H.; Mahlakoiv, T.; Jakobshagen, K.; Buch, T.; et al. Il microbiota ospite controlla costantemente la maturazione e la funzione della microglia nel sistema nervoso centrale. Naz. Neurosci. 2015, 18, 965–977. [CrossRef] [PubMed]

104. Thorburn, AN; McKenzie, CI; Shen, S.; Stanley, D.; Macia, L.; Mason, LJ; Roberts, LK; Wong, CHY; Shim, R.; Roberto, R.; et al. Prova che l’asma è una malattia di origine evolutiva influenzata dalla dieta materna e dai metaboliti batterici. Naz. Comune. 2015, 6, 7320. [CrossRef]

105. Trompette, A.; Gollwitzer, ES; Yadava, K.; Sichelstiel, AK; Sprenger, N.; Ngom-Bru, C.; Blanchard, C.; Junt, T.; Nicod, LP; Harris, Paesi Bassi; et al. Il metabolismo del microbiota intestinale delle fibre alimentari influenza le malattie allergiche delle vie aeree e l’ematopoiesi. Naz. Med. 2014, 20, 159–166. [RifCroce]

106. Connors, J.; Dunn, Kansas; Allott, J.; Bandsma, R.; Rashid, M.; Otley, AR; Bielawski, JP; Van Limbergen, J. La relazione tra acidi biliari fecali e struttura della comunità del microbioma nella malattia di Crohn pediatrica. ISME J. 2020, 14, 702–713. [RifCroce]

107. Winston, JA; Theriot, CM Diversificazione degli acidi biliari ospiti da parte dei membri del microbiota intestinale. Microbi intestinali 2020, 11, 158–171. [RifCroce]

108. Kong, F.; Saif, LJ; Wang, Q. Ruoli degli acidi biliari nella replicazione del virus enterico. Anima. Dis. 2021, 1, 2. [CrossRef]

109. Castañé, H.; Iftimie, S.; Baiges-Gaya, G.; Rodríguez-Tomàs, E.; Jiménez-Franco, A.; López-Azcona, AF; Garrido, P.; Castro, A.; Campi, J.; Joven, J. L'apprendimento automatico e la lipidomica semi-mirata identificano firme lipidiche sieriche distinte nei pazienti ospedalizzati COVID-19-positivi e COVID-19-negativi. Metabolismo 2022, 131, 155197. [CrossRef]

110. Hoving, LR; Katiraei, S.; Heijink, M.; Pronk, A.; van der Wee-Pals, L.; Streefland, T.; Giera, M.; Willems van Dijk, K.; van Harmelen, V. Gli oligosaccaridi mannanici dietetici modulano il microbiota intestinale, aumentano l'escrezione fecale degli acidi biliari e diminuiscono il colesterolo plasmatico e lo sviluppo dell'aterosclerosi. Mol. Nutr. Ris. Alimentare 2018, 62, 1700942. [CrossRef]

111. Li, Y.; Tian, ​​Y.; Cai, W.; Wang, Q.; Chang, Y.; Sole, Y.; Dong, P.; Wang, J. Il nuovo ι-carragenina tetrasaccaride allevia l'accumulo di lipidi nel fegato attraverso la via degli acidi biliari-FXR-SHP/PXR per regolare la conversione del colesterolo e il metabolismo degli acidi grassi nei topi insulino-resistenti. J. Agric. Cibo. Chimica. 2021, 69, 9813–9821. [RifCroce]

112. Sinha, SR; Haileselassie, Y.; Nguyen, LP; Tropini, C.; Wang, M.; Becker, LS; Sim, D.; Jarr, K.; Lancia, ET; Singh, G.; et al. La carenza di acidi biliari secondari indotta da disbiosi promuove l'infiammazione intestinale. Microbo ospite della cellula 2020, 27, 659–670.e5. [RifCroce]

113. Ko, W.-K.; Lee, S.-H.; Kim, SJ; Jo, M.-J.; Kumar, H.; Han, I.-B.; Sohn, S. Effetti antinfiammatori dell'acido ursodesossicolico mediante risposte infiammatorie stimolate dal lipopolisaccaride nei macrofagi RAW 264.7. PLoS ONE 2017, 12, e0180673. [RifCroce]

114. Calmus, Y.; Weill, B.; Ozier, Y.; Chereau, C.; Houssin, D.; Poupon, R. Proprietà immunosoppressive degli acidi chenodesossicolico e ursodesossicolico nel topo. Gastroenterologia 1992, 103, 617–621. [RifCroce]

115. Abdulrab, S.; Al-Maweri, S.; Halboub, acido E. Ursodeossicolico come candidato terapeutico per alleviare e/o prevenire la tempesta di citochine associata a COVID-19-. Med. Ipotesi 2020, 143, 109897. [CrossRef]

116. Wahlström, A.; Sayin, SI; Marshall, H.-U.; Bäckhed, F. Diafonia intestinale tra acidi biliari e microbiota e il suo impatto sul metabolismo dell'ospite. Metab. cellulare 2016, 24, 41–50. [RifCroce]

117. Ding, L.; Yang, L.; Wang, Z.; Huang, W. Recettore nucleare dell'acido biliare FXR e malattie del sistema digestivo. Acta Farm. Peccato. B 2015, 5, 135–144. [CrossRef] [PubMed]

118. Brevini, T.; Maes, M.; Webb, GJ; Giovanni, Virginia Occidentale; Fuchs, CD; Buescher, G.; Wang, L.; Griffiths, C.; Marrone, ml; Scott, NOI; et al. L'inibizione di FXR può proteggere dall'infezione da SARS-CoV-2 riducendo ACE2. Natura 2023, 615, 134–142. [CrossRef] [PubMed]

119. Hollman, DAA; Milona, ​​A.; van Erpecum, KJ; van Mil, SWC Azioni antinfiammatorie e metaboliche di FXR: approfondimenti sui meccanismi molecolari. Biochim. Et Biophys. Acta (BBA)-Mol. Biolo cellulare. Lipidi 2012, 1821, 1443–1452. [CrossRef] [PubMed]

120. Batiha, GE-S.; Al-Quraish, HM; Al-Gareeb, AI; Youssef, FS; El-Sherbeni, SA; Negm, WA Uno studio prospettico sul possibile impatto dell'acido obeticolico contro l'infezione da SARS-CoV-2. Inflammofarmacologia 2023, 31, 9–19. [RifCroce]

121. Li, M.-Y.; Li, L.; Zhang, Y.; Wang, X.-S. Espressione del gene del recettore cellulare SARS-CoV-2 ACE2 in un'ampia varietà di tessuti umani. Infettare. Dis. Povertà 2020, 9, 23–29. [CrossRef] [PubMed]

122. Chaisuwan, W.; Fimolsiripol, Y.; Chaiyaso, T.; Techapun, C.; Leksawasdi, N.; Jantanasakulwong, K.; Rachtanapun, P.; Wangtueai, S.; Sommano, SR; Tu, S.; et al. L’attività antivirale dei polisaccaridi batterici, fungini e algali come ingredienti bioattivi: potenziali usi per migliorare il sistema immunitario e prevenire i virus. Davanti. Nutr. 2021, 8, 772033. [CrossRef] [PubMed]

123. Gupta, Y.; Maciorowski, D.; Zak, SE; Kulkarni, CV; Herbert, AS; Durvasula, R.; Fareed, J.; Tintura, JM; Kempaiah, P. Heparin: una riproposizione semplicistica per prevenire la trasmissione di SARS-CoV-2 alla luce della sua efficacia nanomolare in vitro. interno J. Biol. Macromol. 2021, 183, 203–212. [CrossRef] [PubMed]

124. Kwon, PS; Oh, H.; Kwon, S.-J.; Jin, W.; Zhang, F.; Fraser, K.; Hong, JJ; Linhardt, RJ; Dordick, JS I polisaccaridi solfati inibiscono efficacemente la SARS-CoV-2 in vitro. Cella Scov. 2020, 6, 50. [CrossRef] [PubMed]

125. Chittum, JE; Sankaranarayanan, NV; O'Hara, CP; Desai, UR Sulla selettività del riconoscimento dell'eparan solfato da parte della glicoproteina del picco SARS-CoV-2. ACS Med. Chimica. Lett. 2021, 12, 1710–1717. [CrossRef] [PubMed]

126. Hao, W.; Mamma, B.; Li, Z.; Wang, X.; Gao, X.; Li, Y.; Qin, B.; Shang, S.; Cui, S.; Tan, Z. Legame della proteina picco SARS-CoV-2 ai glicani. Sci. Toro. 2021, 66, 1205–1214. [CrossRef] [PubMed]

127. Villapol, S. Sintomi gastrointestinali associati a COVID-19: Impatto sul microbioma intestinale. Trad. Ris. 2020, 226, 57–69. [RifCroce]

128. Yang, T.; Chakraborty, S.; Saha, P.; Mell, B.; Cheng, X.; Sì, J.-Y.; Mei, X.; Zhou, G.; Mandal, J.; Golonka, R.; et al. Ratti gnotobiotici rivelano che il microbiota intestinale regola l’mRNA del colon di Ace2, il recettore dell’infettività SARS-CoV-2. Ipertensione 2020, 76, e1–e3. [RifCroce]

129. Lui, F.; Zhang, T.; Xue, K.; Zanna, Z.; Jiang, G.; Huang, S.; Li, K.; Gu, Z.; Shi, H.; Zhang, Z.; et al. L'analisi multi-omica fecale rivela diverse alterazioni molecolari dell'ecosistema intestinale nei pazienti affetti da COVID-19. Anale. Chim. Atti 2021, 1180, 338881. [CrossRef]

130. Saint-Criq, V.; Lugo-Villarino, G.; Thomas, M. La disbiosi, la malnutrizione e il potenziamento dell'asse intestino-polmone contribuiscono alle malattie respiratorie legate all'età. Ris. Invecchiamento Rev. 2021, 66, 101235. [CrossRef]

131. Budden, KF; Gellatly, SL; Legno, DLA; Cooper, MA; Morrison, M.; Hugenholtz, P.; Hansbro, PM Collegamenti patogeni emergenti tra microbiota e asse intestino-polmone. Naz. Rev. Microbiol. 2017, 15, 55–63. [CrossRef] [PubMed]

132. Olimpio, F.; Andreata-Santos, R.; Rosa, PC; Santos, W.; Oliveira, C.; Aimbire, F. Lactobacillus rhamnosus ripristina la segnalazione antivirale e attenua la secrezione di citochine dalle cellule epiteliali bronchiali umane esposte al fumo di sigaretta e infettate da SARS-CoV-2. Probiotici Antimicrobici. Proteine ​​2022, 8, 1–16. [CrossRef] [PubMed]

133. Manna, S.; Chowdhury, T.; Chakraborty, R.; Mandal, i peptidi derivati ​​dai probiotici SM e le loro molecole immunomodulatorie possono svolgere un ruolo preventivo contro le malattie virali incluso il COVID-19. Probiotici Antimicrobici. Proteine ​​2021, 13, 611–623. [CrossRef] [PubMed]

134. Marrone, JA; Sanidad, KZ; Lucotti, S.; Lieber, CM; Cox, RM; Ananthanarayanan, A.; Basu, S.; Chen, J.; Shan, M.; Amir, M.; et al. I metaboliti derivati ​​dal microbiota intestinale conferiscono protezione contro l’infezione da SARS-CoV-2. Microbi intestinali 2022, 14, 2105609. [CrossRef] [PubMed]

135. Li, J.; Richards, EM; Handberg, EM; Pepino, CJ; Raizada, MK Il butirrato regola i geni rilevanti per il COVID-19 negli organoidi epiteliali intestinali di ratti normotesi. Ipertensione 2021, 77, e13–e16. [CrossRef] [PubMed]

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