Contributi dell'autore:SB e YEK hanno concepito e progettato la struttura e il contenuto della rivista. Sai Baba analizzò i dati e scrisse il manoscritto. EEM, MS, HB, NM, LK e YEK hanno contribuito alla scrittura, alla revisione e al montaggio. YEK Ha supervisionato il progetto. Tutti gli autori hanno letto e accettato la versione pubblicata del manoscritto.

Il glicoside di cistanche può anche aumentare l'attività della SOD nei tessuti del cuore e del fegato e ridurre significativamente il contenuto di lipofuscina e MDA in ciascun tessuto, eliminando efficacemente vari radicali reattivi dell'ossigeno (OH-, H₂O₂, ecc.) e proteggendo dai danni al DNA causati da radicali OH. I glicosidi feniletanoidi di Cistanche hanno una forte capacità di scavenging dei radicali liberi, una maggiore capacità riducente rispetto alla vitamina C, migliorano l'attività della SOD nella sospensione dello sperma, riducono il contenuto di MDA e hanno un certo effetto protettivo sulla funzione della membrana dello sperma. I polisaccaridi Cistanche possono migliorare l'attività di SOD e GSH-Px negli eritrociti e nei tessuti polmonari di topi sperimentalmente senescenti causati dal D-galattosio, nonché ridurre il contenuto di MDA e collagene nei polmoni e nel plasma e aumentare il contenuto di elastina, hanno un buon effetto scavenging su DPPH, prolunga il tempo di ipossia nei topi senescenti, migliora l'attività della SOD nel siero e ritarda la degenerazione fisiologica del polmone nei topi senescenti sperimentalmente Con la degenerazione morfologica cellulare, gli esperimenti hanno dimostrato che Cistanche ha la buona capacità antiossidante e ha il potenziale per essere un farmaco per prevenire e curare le malattie dell'invecchiamento cutaneo. Allo stesso tempo, l'echinacoside in Cistanche ha una significativa capacità di eliminare i radicali liberi DPPH e ha la capacità di eliminare le specie reattive dell'ossigeno e prevenire la degradazione del collagene indotta dai radicali liberi, e ha anche un buon effetto di riparazione sul danno dell'anione dei radicali liberi della timina.

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Finanziamento:Questa ricerca è stata finanziata dalla OCP Phosboucraâ Foundation, Laâyoune, Marocco, Grant No. PR008.

Dichiarazione del comitato di revisione istituzionale:Non applicabile.

Dichiarazione di consenso informato:Non applicabile.

Dichiarazione sulla disponibilità dei dati:La condivisione dei dati non si applica a questo articolo poiché durante il presente studio non sono stati generati o analizzati set di dati.

Conflitto di interessi:Gli autori dichiarano che la ricerca è stata condotta in assenza di rapporti commerciali o finanziari che potrebbero essere interpretati come potenziali conflitti di interesse.

Riferimenti

1. Tecnologia delle cellule vegetali: il tuo partner nella coltura dei tessuti vegetali. Applicazione della tecnologia delle cellule vegetali nell'industria cosmetica. Disponibile online:

2. Ricerca sulla precedenza. La dimensione del mercato degli estratti vegetali raggiungerà circa 22,49 miliardi di dollari entro il 2030.

3. Ricerca sulla precedenza. La dimensione del mercato degli estratti vegetali vale circa 22,49 miliardi di dollari entro il 2030.

4. Trehan, S.; Michniak-Kohn, B.; Beri, K. Cellule staminali vegetali nei cosmetici: tendenze attuali e direzioni future. Sci futuro. OA 2017, 3, UST226. [CrossRef] [PubMed]

5. Georgiev, V.; Slavov, A.; Vasileva, I.; Pavlov, A. Coltura cellulare vegetale come tecnologia emergente per la produzione di ingredienti cosmetici attivi. Ing. Scienze della vita. 2018, 18, 779–798. [CrossRef] [PubMed]

6. Espinosa-Leal, CA; Puente Garza, CA; García-Lara, S. Coltura di tessuti vegetali in vitro: mezzi per la produzione di composti attivi biologici. Pianta 2018, 248, 1–18. [CrossRef] [PubMed]

7. Namdeo, AG; Ingawale, DK Ashwagandha: progressi negli approcci biotecnologici vegetali per la propagazione e la produzione di composti bioattivi. J. Etnofarmaco. 2021, 271, 113709. [CrossRef]

8. Parrado, C.; Mercado-Saenz, S.; Perez-Davo, A.; Gilaberte, Y.; González, S.; Juarranz, A. Fattori di stress ambientale sull'invecchiamento cutaneo. Approfondimenti meccanicistici. Davanti. Pharmacol. 2019, 10, 759. [CrossRef]

9. Pérez-S0. Youssef, H.; Alhajj, M.; Sharma, S. Anatomia, pelle (tegumento), epidermide; Pubblicazione StatPearls: Treasure Island, FL, USA, 2017.

11. Shin, J.-W.; Kwon, S.‑H.; Choi, J.-Y.; Na, J.-I.; Eh, C.-H.; Choi, HR; Park, K.‑C. Meccanismi molecolari dell'invecchiamento cutaneo e approcci antietà. Int. J. Mol. Sci. 2019, 20, 2126. [CrossRef]

12. Michalak, M.; Pierzak, M.; Kr˛ecisz, B.; Suliga, E. Composti bioattivi per la salute della pelle: una recensione. Nutrienti 2021, 13, 203. [CrossRef]

13. Kobayashi, T.; Ricardo-González, RR; Moro, K. Cellule linfoidi innate residenti nella pelle: guardiani e regolatori innati cutanei. Tendenze Immunol. 2020, 41, 100–112. [CrossRef]

14. Nielsen, MM; Aryal, E.; Safari, E.; Mojsoska, B.; Jenssen, H.; Prabhala, BK Stato attuale dei trasportatori SLC e ABC nella pelle e loro relazione con i metaboliti del sudore e le malattie della pelle. Proteomi 2021, 9, 23. [CrossRef]

15. Wang, SA; Dreesen, O. Biomarcatori di senescenza cellulare e invecchiamento cutaneo. Davanti. Genetta. 2018, 9, 247. [CrossRef] [PubMed]

16. Bontè, F.; Girard, D.; Archambault, J.‑C.; Desmoulière, A. Cambiamenti della pelle durante l'invecchiamento. In Biochimica e Biologia Cellulare dell'Invecchiamento: Parte II Scienze Cliniche; Springer: Berlino/Heidelberg, Germania, 2019; Volume 91, pagine 249–280.

17. Rinnerthaler, M.; Bischof, J.; Strebel, MK; Trost, A.; Richter, K. Stress ossidativo nell'invecchiamento della pelle umana. Biomolecole 2015, 5, 545–589. [CrossRef] [PubMed]

18. Zamarron, A.; Lorio, S.; Gonzalez, S.; Juarranz, A. Fernblock previene i danni alle cellule dermiche indotti da radiazioni visibili e infrarosse. Int. J. Mol. Sci. 2018, 19, 2250. [CrossRef]

19. Kammeyer, A.; Luiten, R. Eventi di ossidazione e invecchiamento cutaneo. Invecchiamento Ris. Rev. 2015, 21, 16–29. [CrossRef] [PubMed]

20. Christensen, L.; Suggs, A.; Baron, E. Fotobiologia ultravioletta in dermatologia. In luce ultravioletta nella salute umana, nelle malattie e nell'ambiente; Springer: Berlino/Heidelberg, Germania, 2017; Volume 996, pagine 89–104.

21. Samtiya, M.; Aluko, RE; Dhewa, T.; Moreno-Rojas, JM Potenziali benefici per la salute dei componenti bioattivi derivati ​​​​da alimenti vegetali: una panoramica. Alimenti 2021, 10, 839. [CrossRef]

22. Bakrim, WB; Nurcahyanti, ADR; Dmirieh, M.; Mahdi, I.; Elgamal, AM; El Raey, Massachusetts; Occhiolino, M.; Sobeh, M. Profilo fitochimico dell'estratto di foglie di Ximenia Americana Var. Caffra e le sue attività antiossidanti, antibatteriche e antiaging in vitro e in Caenorhabditis Elegans: un approccio cosmeceutico e dermatologico. Ossido. Med. Cellula. Longev. 2022, 2022, 3486257. [CrossRef]

23.Zhao, Y.; Wu, Y.; Wang, M. Sostanze bioattive di origine vegetale 30. Handb. Chimica alimentare. 2015, 967, 967–1008.

24. Abeyrathne, EDNS; Nam, K.; Huang, X.; Ahn, DU Struttura, efficacia, meccanismi e applicazioni degli antiossidanti vegetali e animali: una revisione. Antiossidanti 2022, 11, 1025. [CrossRef]

25. Smetanska, I. Produzione sostenibile di polifenoli e antiossidanti mediante colture vegetali in vitro. In sistemi di biotrattamento di piante in vitro; Springer: Berlino/Heidelberg, Germania, 2018; pp. 225–269.

26. Namdeo, A. Elicitazione delle cellule vegetali per la produzione di metaboliti secondari: una revisione. Pharmacogn Rev. 2007, 1, 69–79.

27. Georgiev, MI; Weber, J.; Maciuk, A. Bioprocessing di colture cellulari vegetali per la produzione di massa di composti mirati. Appl. Microbiolo. Biotecnol. 2009, 83, 809–823. [CrossRef]

28. Wang, SI; Chen, CT-T; Sciarappa, W.; Wang, CY; Camp, qualità dei frutti MJ, capacità antiossidante e contenuto di flavonoidi dei mirtilli coltivati ​​in modo biologico e convenzionale. J. Agric. Chimica alimentare. 2008, 56, 5788–5794. [CrossRef] [PubMed]

29. Roberts, SC Produzione e ingegneria dei terpenoidi nella coltura delle cellule vegetali. Nat. Chim. Biol. 2007, 3, 387–395. [CrossRef] [PubMed]

30. Coyago-Cruz, E.; Corell, M.; Stinco, CM; Hernanz, D.; Morena, A.; Meléndez-Martínez, AJ Effetto dell'irrigazione da deficit regolamentato su parametri di qualità, carotenoidi e fenoli di diverse varietà di pomodori (Solanum Lycopersicum L.). ricerca alimentare Int. 2017, 96, 72-83. [CrossRef] [PubMed]

31. Alquézar, B.; Rodrigo, MJ; Lado, J.; Zacarías, L. Uno studio comparativo fisiologico e trascrizionale della biosintesi dei carotenoidi nel pompelmo bianco e rosso (Citrus Paradisi Macf.). Albero genet. Genomi 2013, 9, 1257–1269. [CrossRef]

32. Khoo, KS; Lee, SI; Ooi, CW; Fu, X.; Miao, X.; Ling, Texas; Show, PL Recenti progressi nella bioraffineria di astaxantina da Haematococcus Pluvialis. Biorisor. Tecnol. 2019, 288, 121606. [CrossRef]

33. Igreja, WS; Maia, FDA; Lopes, AS; Chisté, RC La produzione biotecnologica di carotenoidi utilizzando substrati a basso costo è influenzata dai parametri di coltivazione: una rassegna. Int. J. Mol. Sci. 2021, 22, 8819. [CrossRef] [PubMed]

34. Quideau, S.; Deffieux, D.; Douat-Casassus, C.; Pouységu, L. Polifenoli vegetali: proprietà chimiche, attività biologiche e sintesi. Angelo. Chim. Int. ed. 2011, 50, 586–621. [CrossRef]

35 Braga, A.; Ferreira, P.; Oliveira, J.; Roccia, I.; Faria, N. Produzione eterologa di resveratrolo in ospiti batterici: stato attuale e prospettive. Mondo J. Microbiol. Biotecnol. 2018, 34, 1–11. [CrossRef]

36. Beekwilder, J.; Wolswinkel, R.; Jonker, H.; Sala, R.; de Vos, CR; Bovy, A. Produzione di resveratrolo in microrganismi ricombinanti. Appl. Dintorni. Microbiolo. 2006, 72, 5670–5672. [CrossRef]

37. Li, M.; Schneider, K.; Kristensen, M.; Borodin, I.; Nielsen, J. Engineering Lievito per la produzione di alto livello di antiossidanti stilbenoidi. Sci. Rep. 2016, 6, 1–8. [CrossRef]

38. Gaspare, P.; Dudnik, A.; Neves, AR; Föster, J. Engineering Lactococcus Lactis per la produzione di Stilbene. In Proceedings of the 28th International Conference on Polyphenols 2016, Vienna, Austria, 11 luglio 2016; DTU Danimarca: Kongens Lyngby, Danimarca, 2016.

39. Kallscheuer, N.; Vogt, M.; Stenzel, A.; Gatgens, J.; Bott, M.; Marienhagen, J. Costruzione di un ceppo di piattaforma Corynebacterium Glutamicum per la produzione di stilbeni e (2S) -flavanoni. Metab. Ing. 2016, 38, 47–55. [CrossRef] [PubMed]

40. Tien, B.; Liu, J. Resveratrol: una rassegna di fonti vegetali, sintesi, stabilità, modifica e applicazione alimentare. J. Sci. Agroalimentare. 2020, 100, 1392–1404. [CrossRef] [PubMed]

41.Yang, Y.; Lin, Y.; Li, L.; Linhardt, RJ; Yan, Y. Regolazione del metabolismo del malonil-CoA tramite RNA antisenso sintetici per una migliore biosintesi dei prodotti naturali. Metab. Ing. 2015, 29, 217–226. [CrossRef]

42. Miras Moreno, B.; Pedreño, MA; Romero, LA Bioattività e biodisponibilità del fitoene e strategie per migliorarne la produzione. Fitochimica. Rev. 2019, 18, 359–376. [CrossRef]

43. Ramirez-Estrada, K.; Vidal-Limon, H.; Hidalgo, D.; Moyano, E.; Golenioswki, M.; Cusido, RM; Palazon, J. Elicitation, una strategia efficace per la produzione biotecnologica di composti bioattivi ad alto valore aggiunto nelle fabbriche di cellule vegetali. Molecole 2016, 21, 182. [CrossRef]

44. Exposito, O.; Bonfill, M.; Moyano, E.; Onrubia, M.; Mirjalili, M.; Cusido, R.; Palazon, J. Produzione biotecnologica di taxolo e relativi tassoidi: stato attuale e prospettive. Agenti antitumorali Med. Chim. Ex. Corr. Med. Chim.-Agenti antitumorali 2009, 9, 109–121. [CrossRef]

45. Matsubara, K.; Kitani, S.; Yoshioka, T.; Morimoto, T.; Fujita, Y.; Yamada, Y. La coltura ad alta densità delle cellule Coptis Japonica aumenta la produzione di berberina. J. Chem. Tecnol. Biotecnol. 1989, 46, 61–69. [CrossRef]

46. ​​Chattopadhyay, S.; Srivastava, Ak; Bhojwani, SS; Bisaria, VS Produzione di podofillotossina da colture cellulari vegetali di Podophyllum Hexandrum in bioreattore. J.Biosci. Bioeng. 2002, 93, 215-220. [CrossRef]

47.Gao, H.; Xu, J.; Liu, X.; Liu, B.; Deng, X. Effetto della luce sulla produzione di carotenoidi ed espressione dei geni della carotenogenesi nel callo degli agrumi di quattro genotipi. Acta Physiolo. Pianta. 2011, 33, 2485–2492. [CrossRef]

48. Buranasudja, V.; Rani, D.; Malla, A.; Kobtrakul, K.; Vimolmangkang, S. Approfondimenti sulle attività antiossidanti e sul potenziale anti-invecchiamento della pelle dell'estratto di callo di Centella Asiatica (L.). Sci. Rep. 2021, 11, 1–16. [CrossRef]

49. Kikowska, MA; Chmielewska, M.; Włodarczyk, A.; Studzi'nska-Sroka, E.; ˙Zuchowski, J.; Stochmal, A.; Kotwicka, M.; Thiem, B. Effetto dell'estratto di callo ricco di triterpenoidi pentaciclici di Chaenomeles Japonica (Thunb.) Lindl. Ex Spach su vitalità, morfologia e proliferazione dei fibroblasti della pelle umana normale. Molecole 2018, 23, 3009. [CrossRef] [PubMed]

50. Hseu, Y.-C.; Korivi, M.; Lin, F.-Y.; Li, M.-L.; Lin, RW; Wu, J.-J.; Yang, H.‑L. L'acido trans-cinnamico attenua il fotoinvecchiamento indotto dai raggi UVA attraverso l'inibizione dell'attivazione AP-1 e l'induzione dei geni antiossidanti mediati da Nrf2- nei fibroblasti della pelle umana. J. Dermatol. Sci. 2018, 90, 123–134. [CrossRef] [PubMed]

51. Adhikari, D.; Panthi, VK; Pangeni, R.; Kim, HJ; Park, JW Preparazione, caratterizzazione e attività biologiche di ingredienti topici antietà in un estratto di callo di agrumi Junos. Molecole 2017, 22, 2198. [CrossRef] [PubMed]

52. Hong, Y.; Lee, H.; Tran, Q.; Bayarmunkh, C.; Boldbaatar, D.; Kwon, SH; Parco, J.; Park, J. Effetti benefici di Diplectria Barbata (Wall. Ex CB Clarke) Estratto di Franken et Roos sull'invecchiamento e sugli antiossidanti in Vitro e in Vivo. tossico. Ris. 2021, 37, 71–83. [CrossRef]

53. Menbari, A.; Bahramnejad, B.; Abuzaripoor, M.; Shahmansouri, E.; Zarei, MA Istituzione di calli e colture in sospensione cellulare di frutti di mela Granny Smith e attività antitirosinasi dei loro estratti. Sci. Ortico. 2021, 286, 110222. [CrossRef]

54. Machała, P.; Liudvytska, O.; Kicel, A.; Dziedzic, A.; Olszewska, MA; ˙Zbikowska, HM Valorizzazione del potenziale fotoprotettivo dell'estratto di foglie di oliva standardizzato fitochimicamente (Olea Europaea L.) nei fibroblasti della pelle umana irradiati con raggi UVA. Molecole 2022, 27, 5144. [CrossRef]

55. Lee, H.; Hong, Y.; Tran, Q.; Cho, H.; Kim, M.; Kim, C.; Kwon, SH; Parco, S.; Parco, J.; Park, J. Un nuovo ruolo per il ginsenoside RG3 nell'antiinvecchiamento tramite la funzione dei mitocondri nei fibroblasti cutanei umani irradiati con ultravioletti. Ricerca J. Ginseng. 2019, 43, 431–441. [CrossRef]

56. Lee, H.; Hong, Y.; Kwon, SH; Parco, J.; Park, J. Effetti antietà di Piper Cambodianum P. Fourn. Estratto su normali cellule di fibroblasti dermici umani e un modello di guarigione delle ferite nei topi. Clino. Interv. Invecchiamento 2016, 11, 1017.

57. Rani, D.; Buranasudja, V.; Kobtrakul, K.; De-Eknamkul, W.; Vimolmangkang, S. Elicitazione di Pueraria Candollei Var. Le cellule in sospensione di Mirifica promettono un potenziale antiossidante, implicando un'attività antietà. Culto dell'organo del tessuto delle cellule vegetali. PCTOC 2021, 145, 29–41. [CrossRef]

58. Kim, HJ; Park, JW Attività antietà dell'estratto di callo vegetale di Pyrus Pyrifolia Var Culta. Troppo. J. Pharma. Ris. 2017, 16, 1579–1588. [CrossRef]

59. Kim, HR; Kim, S.; Jie, EY; Kim, SI; Ah, WS; Jeong, SI; Yu, K.-Y.; Kim, SW; Kim, S.Y. Effetti dell'estratto di Tiarella Polyphylla D. Don Callus sul fotoinvecchiamento nelle cellule Hs68 dei fibroblasti del prepuzio umano. Nat. prod. Comune. 2021, 16, 1934578X211016970. [CrossRef]

60. Chalageri, G.; Dhananjaya, S.; Raghavendra, P.; Kumar, LS; Babu, U.; Varma, SR Sostituzione delle parti vegetative delle piante con estratti di cellule di callo: caso di studio con Woodfordia Fruticosa Kurz.–Un potente ingrediente nelle formulazioni per la cura della pelle. S. Afr. J.Bot. 2019, 123, 351–360. [CrossRef]

61.Zhao, P.; Allam, MB; Lee, S.‑H. Protezione del fotoinvecchiamento indotto da UVB mediante l'estratto acquoso di tè Fuzhuan-Brick tramite MAPK/Nrf2- Down-regulation mediata da MMP-1. Nutrienti 2018, 11, 60. [CrossRef] [PubMed]

62. Hseu, Y.-C.; Tsai, Y.-C.; Huang, P.-J.; Ou, T.-T.; Korivi, M.; Hsu, L.-S.; Chang, SH; Wu, C.-R.; Yang, H.‑L. Gli effetti dermato-protettivi del lucidone di Lindera Erythrocarpa attraverso l'induzione di geni antiossidanti mediati da Nrf2- nei cheratinociti della pelle umana irradiati con raggi UVA. J. Funzione. Alimenti 2015, 12, 303–318. [CrossRef]

63. Cho, WK; Kim, H.-I.; Kim, S.-Y.; SEO, HH; Canzone, J.; Kim, J.; Shin, DS; Gioia.; Choi, H.; Lee, JH Effetti antietà dell'estratto di coltura del callo di Leontopodium Alpinum (Edelweiss) attraverso la profilazione del trascrittoma. Geni 2020, 11, 230. [CrossRef]

64. Vichit, W.; Saewan, N. Attività antiossidante e antietà della cultura del callo da tre varietà di riso. Cosmetici 2022, 9, 79. [CrossRef]

65. Kunchana, K.; Jarisarapurin, W.; Chularojmontri, L.; Wattanapitayakul, SK Potenziale utilizzo dell'estratto di frutta di Amla (Phyllanthus Emblica L.) per proteggere i cheratinociti della pelle dall'infiammazione e dall'apoptosi dopo l'irradiazione UVB. Antiossidanti 2021, 10, 703. [CrossRef]

66. Farràs, A.; Mitjans, M.; Maggi, F.; Caprioli, G.; Vinardell, deputato; López, V. Polypodium Vulgare L. (Polypodiaceae) come fonte di composti bioattivi: profilo polifenolico, citotossicità e proprietà citoprotettive in diverse linee cellulari. Davanti. Pharmacol. 2021, 12, 727528. [CrossRef]

67. Parco, DE; Adhikari, D.; Pangeni, R.; Panthi, VK; Kim, HJ; Park, JW Preparazione e caratterizzazione dell'estratto di callo da Pyrus Pyrifolia e studio dei suoi effetti sulla rigenerazione della pelle. Cosmetici 2018, 5, 71. [CrossRef]

68. Sobeh, M.; Petruk, G.; Osman, S.; El Raey, Massachusetts; Imbimbo, P.; Monti, DM; Wink, M. Isolamento di miricitrina e 3,5-Di-O-Methyl Gossypetin da Syzygium Samarangense e valutazione del loro coinvolgimento nella protezione dei cheratinociti dallo stress ossidativo tramite l'attivazione della via Nrf-2. Molecole 2019, 24, 1839. [CrossRef]

69. Zahid, NA; Jaafar, HZ; Hakiman, M. Micropropagation of Ginger (Zingiber Officinale Roscoe) 'Bentong' e valutazione dei suoi metaboliti secondari e attività antiossidanti rispetto alla pianta propagata convenzionalmente. Piante 2021, 10, 630. [CrossRef] [PubMed]

70. Jin, S.; Hyun, TK L'espressione ectopica della produzione del pigmento antociano 1 (PAP1) migliora le proprietà antiossidanti e anti melanogeniche delle radici pelose del ginseng (Panax Ginseng CA Meyer). Antiossidanti 2020, 9, 922. [CrossRef] [PubMed]

71.Sena, LM; Zappelli, C.; Apone, F.; Barbulova, A.; Tito, A.; Leone, A.; Oliviero, T.; Ferracane, R.; Fogliano, V.; Colucci, gli estratti di radice pelosa di G. Brassica Rapa promuovono la depigmentazione della pelle modulando la produzione e la distribuzione della melanina. J. Cosmeto. Dermatolo. 2018, 17, 246–257. [CrossRef] [PubMed]

72. Petruk, G.; Illiano, A.; Del Giudice, R.; Raiola, A.; Amoresano, A.; Rigano, MM; Piccoli, R.; Monti, DM malvidina e derivati ​​della cianidina dal frutto di Açai (Euterpe Oleracea Mart.) Contrastano lo stress ossidativo indotto dai raggi UV-A nei fibroblasti immortalizzati. J. Fotochimica. Fotobiolo. B 2017, 172, 42–51. [CrossRef] [PubMed]

73. Apone, F.; Tito, A.; Carola, A.; Arciello, S.; Tortore, A.; Filippini, L.; Monoli, I.; Cucchiara, M.; Gibertoni, S.; Chrispeels, MJ Una miscela di peptidi e zuccheri derivati ​​dalle pareti delle cellule vegetali aumenta le risposte di difesa delle piante allo stress e attenua i cambiamenti molecolari associati all'invecchiamento nelle cellule della pelle in coltura. J. Biotecnol. 2010, 145, 367–376. [CrossRef]

74. Sole, Z.; Park, Sud Africa; Hwang, E.; Zhang, M.; SEO, SA; Lin, P.; Yi, T. Thymus Vulgaris allevia i danni cutanei indotti dall'irradiazione UVB tramite l'inibizione di MAPK/AP-1 e l'attivazione del sistema antiossidante Nrf2-ARE. J.Cell. Mol. Med. 2017, 21, 336–348. [CrossRef]

75. Tito, A.; Carola, A.; Bimonte, M.; Barbulova, A.; Arciello, S.; de Laurentiis, F.; Monoli, I.; Collina, J.; Gibertoni, S.; Colucci, G. Un estratto di cellule staminali di pomodoro, contenente composti antiossidanti e fattori chelanti del metallo, protegge le cellule della pelle dai danni indotti dai metalli pesanti. Int. J. Cosmeto. Sci. 2011, 33, 543–552. [CrossRef]

76. Jiao, J.; Gai, Q.-Y.; Wang, X.; Qin, Q.-P.; Wang, Z.-Y.; Liu, J.; Fu, Y.-J. Elicitazione del chitosano di colture di radici pelose di Isatis Tinctoria L. per migliorare la produttività dei flavonoidi e l'espressione genica e l'attività antiossidante correlata. Ind. Coltivazioni Prod. 2018, 124, 28–35. [CrossRef]

77. Isah, T.; Umar, S.; Mujib, A.; Sharma, deputato; Rajasekharan, P.; Zafar, N.; Frukh, A. Metabolismo secondario dei prodotti farmaceutici nell'impianto in colture in vitro: strategie, approcci e limiti per ottenere una resa più elevata. Culto dell'organo del tessuto delle cellule vegetali. PCTOC 2018, 132, 239–265. [CrossRef]

78. Lee, K.-J.; Parco, Y.; Kim, J.-Y.; Jeong, T.-K.; Yun, K.-S.; Paek, K.-Y.; Park, S.Y. Produzione di biomassa e composti bioattivi da colture di radici avventizie di Polygonum multiflorum utilizzando bioreattori Air-Lift. J. Biotecnologie vegetali. 2015, 42, 34-42. [CrossRef]

79.Sharma, P.; Padh, H.; Shrivastava, N. Hairy Root Cultures: un sistema biologico adatto per lo studio delle vie metaboliche secondarie nelle piante. Ing. Scienze della vita. 2013, 13, 62–75. [CrossRef]

80. Grzegorczyk, I.; Królicka, A.; Wysoki ´nska, H. Istituzione di Salvia Officinalis L. Colture di radici pelose per la produzione di acido rosmarinico. Z. Für Naturforschung C 2006, 61, 351–356. [CrossRef]

81. Weremczuk-Je˙zyna, I.; Grzegorczyk-Karolak, I.; Frydrych, B.; Królicka, A.; Wysoki ´nska, H. Radici pelose di Dracocephalum Moldavica: contenuto di acido rosmarinico e potenziale antiossidante. Acta Physiolo. Pianta. 2013, 35, 2095–2103. [CrossRef]

82. Srivastava S.; Conlan, XA; Adholeya, A.; Cahill, DM Elite Hairy Roots of Ocimum Basilicum come nuova fonte di acido rosmarinico e antiossidanti. Culto dell'organo del tessuto delle cellule vegetali. PCTOC 2016, 126, 19–32. [CrossRef]

83. Shekarchi, M.; Hajimehdipoor, H.; Saeidnia, S.; Gohari, AR; Hamedani, MP Studio comparativo del contenuto di acido rosmarinico in alcune piante della famiglia delle Labiatae. Farmacogno. Mag. 2012, 8, 37.

84. Apone, F.; Tito, A.; Arciello, S.; Carotenuto, G.; Colucci, colture di tessuti vegetali MG come fonti di ingredienti per applicazioni per la cura della pelle. Anno. Plant Rev. Online 2018, 3, 135–150.

85. Ono, NN; Tian, ​​L. La molteplicità delle culture delle radici pelose: possibilità prolifiche. Pianta Sci. 2011, 180, 439–446. [CrossRef] [PubMed]

86. Jin, S.; Botto, S.; Ahn, MA-A.; Porro.; Kim, K.; Hyun, TK La sovrapproduzione di antociani nelle radici pelose di ginseng migliora le loro attività antiossidanti, antimicrobiche e anti-elastasi. J. Biotecnologie vegetali. 2021, 48, 100–105. [CrossRef]

87. Bouzroud, S.; El Maiden, E.; Sobeh, M.; Devkota, KP; Boukcim, H.; Kouisni, L.; El Kharrassi, Y. Micropropagazione di Opuntia e altre specie di cactus attraverso la proliferazione dei germogli ascellari: una revisione completa. Davanti. Pianta Sci. 2022, 13, 926653. [CrossRef] [PubMed]

88. Gonçalves, S.; Romano, A. Cultura in vitro di lavanda (Lavandula spp.) e produzione di metaboliti secondari. Biotecnol. Avv. 2013, 31, 166–174. [CrossRef]

89. Goyali, J.; Igamberdiev, A.; Debnath, S. La micropropagazione influisce non solo sulla morfologia del frutto del mirtillo Lowbush (Vaccinium Angustifolium Ait.), ma anche sulle sue proprietà medicinali. In Proceedings of the International Symposium on Medicinal Plants and Natural Products, Montreal, QC, Canada, 17–19 giugno 2013; pp. 137–142.

90. Dakah, A.; Zaid, S.; Solimano, M.; Abbas, S.; Wink, M. Propagazione in vitro della pianta medicinale Ziziphora Tenuior L. e valutazione della sua attività antiossidante. Saudita J. Biol. Sci. 2014, 21, 317–323. [CrossRef] [PubMed]

91. Sooriamuthu, S.; Varghese, RJ; Bayyapureddy, A.; Giovanni, SST; Narayanan, R. Produzione indotta dalla luce di composti antidepressivi in ​​colture di germogli eziolati di Hypericum Hookerianum Wight & Arn. (Hypericaceae). Culto dell'organo del tessuto delle cellule vegetali. PCTOC 2013, 115, 169–178.

92. Grzegorczyk, I.; Matkowski, A.; Wysoki ´nska, H. Attività antiossidante degli estratti da colture in vitro di Salvia Officinalis L. Food Chem. 2007, 104, 536–541. [CrossRef]

93. Al Khateeb, W.; Hussein, E.; Quota, L.; Alu'datt, M.; Al-Shara, B.; Abu-Zaiton, A. Propagazione e caratterizzazione in vitro del contenuto fenolico insieme alle attività antiossidanti e antimicrobiche di Cichorium Pumilum Jacq. Culto dell'organo del tessuto delle cellule vegetali. PCTOC 2012, 110, 103–110. [CrossRef]

94. Rehmann, R.; Chaudhary, M.; Khawar, K.; Lu, G.; Mannan, A.; Zia, M. Propagazione in vitro di Caralluma tuberculata e valutazione del potenziale antiossidante. Biologia (Bratisburgo) 2014, 69, 341–349. [CrossRef]

95. Abdulhafiz, F.; Maometto, A.; Kayat, F.; Zaccaria, S.; Hamzah, Z.; Reddy Pamuru, R.; Gundala, PB; Reduan, micropropagazione MFH di Alocasia Longiloba Miq e proprietà antiossidanti comparative di estratti etanolici della pianta coltivata in campo, callo propagato in vitro e derivato in vitro. Piante 2020, 9, 816. [CrossRef]

96. Ikeuchi, M.; Sugimoto, K.; Iwase, A. Plant Callus: meccanismi di induzione e repressione. Cellula vegetale 2013, 25, 3159–3173. [CrossRef]

97. Fehér, A. Callus, dedifferenziazione, totipotenza, embriogenesi somatica: cosa significano questi termini nell'era della biologia vegetale molecolare? Davanti. Pianta Sci. 2019, 10, 536. [CrossRef]

98. Abdulhafiz, F. Tecnologie di coltura cellulare vegetale: alternative promettenti per produrre metaboliti secondari di alto valore. Arabo. J. Chem. 2022, 15, 104161. [CrossRef]

99. Dal Toso, R.; Melandri, F. Tecnologia di coltura cellulare vegetale: una nuova fonte di ingredienti. CURA 2010, 28, 35–38.

100. Fremont, F. Cell Culture: un approccio innovativo per la produzione di principi attivi vegetali; Russell Publishing Ltd.: Brasted, Regno Unito, 2018.

101. Gao, Wyoming; Wang, J.; Li, J.; Wang, Q. Produzione di biomassa e composti bioattivi da colture di sospensione cellulare di Panax Quinquefolium L. e Glycyrrhiza Uralensis Fisch. Nella produzione di biomasse e composti bioattivi utilizzando la tecnologia dei bioreattori; Springer: Berlino/Heidelberg, Germania, 2014; pp. 143–164.

102. Bagheri, F.; Tahvilian, R.; Karimi, N.; Chalabi, M.; Azami, M. Shikonin Produzione di Callus Culture di Onosma Bulbotrichom come ingrediente farmaceutico attivo. Iran. J. Pharma. Ris. IJPR 2018, 17, 495. [PubMed]

103. Guò, S.; Uomo, S.; Gao, W.; Liu, H.; Zhang, L.; Xiao, P. Produzione di flavonoidi e polisaccaridi aggiungendo elicitore in diversi processi di coltivazione cellulare di Glycyrrhiza Uralensis Fisch. Acta Physiolo. Pianta. 2013, 35, 679–686. [CrossRef]

104. Wang, QJ; Zheng, LP; Sima, YH; Yuan, HY; Wang, JW Methyl Jasmonate stimola la produzione di 20-idrossiecdisone nelle colture in sospensione cellulare di "Achyranthes Bidentata". Plant Omics 2013, 6, 116–120.

105.Bimonte, M.; Tito, A.; Carola, A.; Barbulova, A.; Apone, F.; Colucci, G.; Cucchiara, M.; Hill, Estratto di coltura cellulare J. Dolichos per la protezione dai danni UV. Toilette Cosmet 2014, 129, 46–56.

106. Imparato, G.; Casale, C.; Scamardella S.; Urciuolo, F.; Bimonte, M.; Apone, F.; Colucci, G.; Netti, P. Un nuovo derma ingegnerizzato per la ricerca sul fotodanneggiamento in vitro. J. Tissue Ing. Regen. Med. 2017, 11, 2276–2285. [CrossRef] [PubMed]

107. Vertuani, S.; Beghelli, E.; Scalambra, E.; Malisardi, G.; Copetti, S.; Toso, RD; Baldisserotto, A.; Manfredini, S. Studi di attività e stabilità del verbascoside, un nuovo antiossidante, nelle formulazioni topiche dermocosmetiche e farmaceutiche. Molecole 2011, 16, 7068–7080. [CrossRef]

108. Bimonte, M.; Carola, A.; Tito, A.; Barbulova, A.; Carucci, F.; Apone, F. Coffea Bengalensis per applicazioni antirughe e tonificazione della pelle. Cosmet. Toilette. 2011, 126, 644–650.

109. Yue, W.; Ming, D.; Lin, B.; Rahman, K.; Zheng, C.-J.; Han, T.; Qin, L. Colture di sospensione cellulare di piante medicinali: applicazioni farmaceutiche e strategie ad alto rendimento per i metaboliti secondari desiderati. Critico. Rev. Biotecnol. 2016, 36, 215–232. [CrossRef]

110. Baenas, N.; Garcia-Viguera, C.; Moreno, DA Elicitazione: uno strumento per arricchire la composizione bioattiva degli alimenti. Molecole 2014, 19, 13541–13563. [CrossRef]

111. Vasconsuelo, A.; Boland, R. Aspetti molecolari delle prime fasi di elicitazione dei metaboliti secondari nelle piante. Pianta Sci. 2007, 172, 861–875. [CrossRef]

112. Halder, M.; Sarkar, S.; Jha, S. Elicitation: uno strumento biotecnologico per una maggiore produzione di metaboliti secondari nelle colture di radici pelose. Ing. Scienze della vita. 2019, 19, 880–895. [CrossRef] [PubMed]

113. Usman H.; Ullah, MA; Jan, H.; Siddiquah, A.; Drouet, S.; Anjum, S.; Giglioli-Guviarc'h, N.; Hano, C.; Abbasi, BH Effetti interattivi delle luci monocromatiche ad ampio spettro sulla produzione fitochimica, attività antiossidanti e biologiche delle colture di Solanum Xanthocarpum Callus. Molecole 2020, 25, 2201. [CrossRef] [PubMed]

114. D'Alessandro, R.; Docimo, T.; Graziani, G.; D'Amelia, V.; De Palma, M.; Cappetta, E.; Tucci, M. L'eccitazione degli stress abiotici potenzia la produttività del cardo Calli come bio-fabbriche per la produzione di metaboliti specializzati. Antiossidanti 2022, 11, 1041. [CrossRef] [PubMed]

115. Chen, R.; Li, Q.; Abbronzatura, H.; Chen, J.; Xiao, Y.; Mamma, R.; Gao, S.; Zerbe, P.; Chen, W.; Zhang, L. Rete da gene a metabolita per la biosintesi dei lignani nelle colture di radici pelose di Isatis Indigotica provocate da MeJA. Davanti. Pianta Sci. 2015, 6, 952. [CrossRef]

116. Wen, T.; Hao, Y.-J.; An, X.-L.; Sole, H.-D.; Li, Y.-R.; Chen, X.; Piao, X.-C.; Lian, M.-L. Miglioramento dell'accumulo di composti bioattivi nelle colture cellulari di Orostachys Cartilagineus A. Bor. attraverso l'eccitazione con acido salicilico e l'effetto dell'estratto cellulare sull'attività bioattiva. Ind. Coltivazioni Prod. 2019, 139, 111570. [CrossRef]

117. Al-Khayri, JM; Naik, PM Produzione indotta da elicitore di biomassa e composti fenolici farmaceutici nella coltura in sospensione cellulare di palma da datteri (Phoenix Dactylifera L.). Molecole 2020, 25, 4669. [CrossRef]

118. Duran, MDL; Zabalà, MEA; Londoño, GAC Ottimizzazione della produzione di flavonoidi nella coltura cellulare vegetale di Thevetia Peruviana suscitata con metil jasmonato e acido salicilico. Braz. Arco. Biol. Tecnol. 2021, 64, e21210022. [CrossRef]

119. Wongwicha, W.; Tanaka, H.; Shoyama, Y.; Putalun, W. Methyl Jasmonate Elicitation migliora la produzione di glicirrizina nelle colture di radici pelose di Glycyrrhiza Inflata. Z. Für Naturforschung C 2011, 66, 423–428. [CrossRef]

120.Shoja, AA; Cirak, C.; Ganjeali, A.; Cheniany, M. Stimolazione dell'accumulo di composti fenolici e attività antiossidante nella coltura in vitro di Salvia Tebesana Bunge in risposta a elicitori di nano-TiO2 e metil jasmonato. Culto dell'organo del tessuto delle cellule vegetali. PCTOC 2022, 149, 423–440. [CrossRef]

121. Pilaisangsuree, V.; Somboon, T.; Tonglairum, P.; Keawracha, P.; Wongsa, T.; Kongbangkerd, A.; Limmongkon, A. Potenziamento dei composti di stilbene e attività antinfiammatoria del metil jasmonato e della ciclodestrina ha suscitato la coltura della radice pelosa dell'arachide. Culto dell'organo del tessuto delle cellule vegetali. PCTOC 2018, 132, 165–179. [CrossRef]

122. Ayola-Oresanya, IO; Sonibare, MA; Gueye, B.; Abberton, MT; Morlock, GE Elicitazione dei metaboliti antiossidanti nelle specie di Musa nella coltura di germogli in vitro utilizzando saccarosio, temperatura e acido jasmonico. Culto dell'organo del tessuto delle cellule vegetali. PCTOC 2021, 146, 225–236. [CrossRef]

123. Mosavat, N.; Golkar, P.; Yousefifard, M.; Javed, R. Modulazione della crescita del callo e dei metaboliti secondari in diverse specie di timo e Zataria Multiflora micropropagata sotto stress di nanoparticelle di ZnO. Biotecnol. Appl. Biochimica. 2019, 66, 316–322. [CrossRef] [PubMed]

124. Alì, A.; Mohammed, S.; Khan, Massachusetts; Raja, NI; Arif, M.; Kamil, A.; Mashwani, Z.‑R. Nanoparticelle d'argento suscitate in colture di callo in vitro per l'accumulo di biomassa e metaboliti secondari in Caralluma tuberculata. Artif. Cellule Nanomedicina Biotechnol. 2019, 47, 715–724. [CrossRef] [PubMed]

125. Chung, IM-M.; Rajakumar, G.; Thiruvengadam, M. Effetto delle nanoparticelle d'argento sulla produzione di composti fenolici e attività biologiche nelle colture di radici pelose di Cucumis anguria. Acta Biol. Sospeso. 2018, 69, 97–109. [CrossRef]

126. Javed, R.; Mohammed, A.; Yucesan, B.; Gurel, E.; Kausar, R.; Zia, M. CuO Le nanoparticelle influenzano significativamente la coltura in vitro, i glicosidi steviolici e le attività antiossidanti della Stevia rebaudiana Bertoni. Culto dell'organo del tessuto delle cellule vegetali. PCTOC 2017, 131, 611–620. [CrossRef]

127. Zigoneanu, IG; Astete, CE; Sabliov, nanoparticelle CM con intrappolato -tocoferolo: sintesi, caratterizzazione e rilascio controllato. Nanotecnologia 2008, 19, 105606. [CrossRef] [PubMed]

128. Królicka, A.; Lojkowska, E.; Staniszewska, I.; Malinski, E.; Szafranek, J. Identificazione dei metaboliti secondari nella coltura in vitro di Ammi Majus trattati con elicitori. In Proceedings of the IV International Symposium on In Vitro Culture and Horticultural Breeding, Tampere, Finland, 2–7 July 2000; pp. 255–258.

129. Fazal, H.; Abbasi, BH; Ahmed, N.; Alì, M.; Shujait Ali, S.; Khan, A.; Wei, D.-Q. Produzione sostenibile di biomassa e metaboliti secondari importanti dal punto di vista industriale nelle colture cellulari di autoguarigione (Prunella Vulgaris L.) provocate da nanoparticelle d'argento e d'oro. Artif. Cellule Nanomedicina Biotechnol. 2019, 47, 2553–2561. [CrossRef] [PubMed]

130. Yan, D.; Hu, Z.; Tan, RX; Wu, J. Produzione efficiente e recupero di tanshinones diterpenoidi nelle colture di radici pelose di Salvia Miltiorrhiza con adsorbimento, elicitazione e funzionamento semi-continuo in situ. J. Biotecnol. 2005, 119, 416–424. [CrossRef]

131. Shakeran, Z.; Keyhanfar, M.; Ghanese, M. Elicitazione biotica per la produzione di scopolamina da colture di radici pelose di Datura Metel. Mol. Biol. Ris. Comune. 2017, 6, 169.

132. Lu, M.; Wang, H.; Teng, W. Effetti dell'elicitazione sulla produzione di saponina nella coltura cellulare del Panax Ginseng. Plant Cell Rep. 2001, 20, 674–677. [CrossRef]

133. Shams-Ardakani, M.; Hemmati, S.; Mohagheghzadeh, A. Effetto degli elicitori sul miglioramento della biosintesi della podofillotossina nelle colture in sospensione dell'album di Linum. DARU J. Farmacia. Sci. 2005, 13, 56–60.

134. Palazon, J.; Cusido, RM; Bonfill, M.; Mallol, A.; Moyano, E.; Morales, C.; Piñol, MT Elicitazione di diversi fenotipi di radici trasformate Panax Ginseng per una migliore produzione di ginsenoside. Fisiolo vegetale. Biochimica. 2003, 41, 1019–1025. [CrossRef]

135. Murthy, NH; Lee, E.-J.; Paek, K.-Y. Produzione di metaboliti secondari da colture cellulari e di organi: strategie e approcci per il miglioramento della biomassa e l'accumulo di metaboliti. Culto dell'organo del tessuto delle cellule vegetali. PCTOC 2014, 118, 1–16. [CrossRef]

136. Javid, A.; Gampe, N.; Gelana, F.; György, Z. Migliorare l'accumulo di Rosavins in Rhodiola Rosea L. Piante coltivate in vitro mediante alimentazione precursore. Agronomia 2021, 11, 2531. [CrossRef]

137. Ahmadian Chashmi, N.; Sharifi, M.; Behmanesh, M. Lignan Enhancement in Hairy Root Cultures of Linum Album Using Coniferaldehyde and Methylenedioxycinnamic Acid. Prepara. Biochimica. Biotecnol. 2016, 46, 454–460. [CrossRef]

138. Karppinen, K.; Hokkanen, J.; Tolonen, A.; Mattila, S.; Hohtola, A. Biosintesi di iperforina e adiperforina da precursori di amminoacidi in colture di germogli di iperico perforato. Fitochimica 2007, 68, 1038–1045. [CrossRef]

139. Jeong, CS-S.; Murthy, HN; Hahn, E.-J.; Paek, K.-Y. Miglioramento della produzione di ginsenosidi nelle colture in sospensione di ginseng mediante strategia di rifornimento medio. J.Biosci. Bioeng. 2008, 105, 288–291. [CrossRef]

140. Wu, C.-H.; Murthy, HN; Hahn, E.-J.; Paek, K.-Y. Migliore produzione di derivati ​​dell'acido caffeico nelle colture in sospensione di Echinacea purpurea mediante strategia di rifornimento medio. Arco. Farm. Ris. 2007, 30, 945–949. [CrossRef]

141. Wang, C.; Wu, J.; Mei, X. Miglioramento della produzione e del rilascio di taxolo nelle colture di sospensione cellulare di Taxus Chinensis con solventi organici selezionati e alimentazione di saccarosio. Biotecnol. progr. 2001, 17, 89–94. [CrossRef]

142. Yadav, D.; Tanveer, A.; Malviya, N.; Yadav, S. Panoramica e principi di bioingegneria: i driver delle tecnologie Omics. In Tecnologie Omiche e Bioingegneria; Elsevier: Amsterdam, Paesi Bassi, 2018; pp. 3–23.

143. Gonçalves, S.; Romano, A. Produzione di metaboliti secondari vegetali utilizzando strumenti biotecnologici. Secondo. Metab.-Fonti Appl. 2018, 5, 81–99.

144. Vasquez, SM; Abascal, GGW; Leale, CE; Cardineau, GA; Lara, SG Applicazione dell'ingegneria metabolica per migliorare il contenuto di alcaloidi nelle piante medicinali. Metab. Ing. Comune. 2022, 14, e00194. [CrossRef] [PubMed]

145. Verpoorte, R.; Contin, A.; Memelink, J. Biotecnologia per la produzione di metaboliti secondari vegetali. Fitochimica. Rev. 2002, 1, 13–25. [CrossRef]

146. Oksman-Caldentey, K.-M.; Arroo, R. Regolazione del metabolismo degli alcaloidi tropanici nelle piante e nelle colture cellulari vegetali. In Ingegneria Metabolica del Metabolismo Secondario delle Piante; Springer: Berlino/Heidelberg, Germania, 2000; pp. 253–281.

147. Zhong, J.-J. Coltura cellulare vegetale per la produzione di paclitaxel e altri taxani. J.Biosci. Bioeng. 2002, 94, 591–599. [CrossRef] [PubMed]

148. Singh, B.; Sharma, RA Metaboliti secondari delle piante medicinali, set di 4 volumi: proprietà etnofarmacologiche, attività biologica e strategie di produzione; John Wiley & Sons: Hoboken, NJ, Stati Uniti, 2020; ISBN 3-527-34732-1.

149. Galih, PR; Esyanti, RR Effetto dell'immobilizzazione sulla crescita cellulare e sul contenuto di alcaloidi nella coltura di aggregati cellulari di Eurycoma Longifolia Jack. Int J Chem Env. Biol Sci 2014, 2, 90–93.

150. Zhang, p.; Zhou, W.; Vanga, P.; Wang, L.; Tang, M. Miglioramento della produzione di chitosanasi mediante immobilizzazione cellulare di Gongronella sp. JG. Braz. J. microbiol. 2013, 44, 189–195. [CrossRef] [PubMed]

151. Premjet, D.; Tachibana, S. Produzione di podofillotossina da colture cellulari immobilizzate di Juniperus chinensis. Pak. J Biol Sci 2004, 7, 1130–1134.

152. Vanisree, M.; Lee, C.-Y.; Lo, S.-F.; Nalawade, SM; Lin, CY; Tsay, H.‑S. Studi sulla produzione di alcuni importanti metaboliti secondari da piante medicinali mediante colture di tessuti vegetali. Bot Bull Acad Sin 2004, 45, 1–22.

153. Hussein, MS; Fareed, S.; Ansari, S.; Rahman, Massachusetts; Ahmad, IZ; Saeed, M. Approcci attuali verso la produzione di metaboliti vegetali secondari. J. Pharma. Sci bioalleato. 2012, 4, 10. [CrossRef]

154.Malik, S.; Hossein Mirjalili, M.; Fett-Neto, AG; Mazzafera, P.; Bonfill, M. Vivere tra due mondi: sistemi di coltura a due fasi per la produzione di metaboliti secondari vegetali. Critico. Rev. Biotecnol. 2013, 33, 1–22. [CrossRef]

155. Lee-Parsons, CW; Shuler, ML L'effetto di Ajmalicine Spiking e tempi di aggiunta di resina sulla produzione di alcaloidi indolici da colture cellulari di Catharanthus roseus. Biotecnol. Bioeng. 2002, 79, 408–415. [CrossRef]

156. Komaraia, P.; Ramakrishna, S.; Reddanna, P.; Kishor, PK Maggiore produzione di plumbagin in cellule immobilizzate di plumbago rosea mediante elicitazione e adsorbimento in situ. J. Biotecnol. 2003, 101, 181-187. [CrossRef]

157. Klvana, M.; Legros, R.; Jolicoeur, M. In Situ, la strategia di estrazione influisce sui flussi di produzione di alcaloidi benzofenantridinici nelle colture in sospensione di Eschscholtzia Californica. Biotecnol. Bioeng. 2005, 89, 280-289. [CrossRef] [PubMed]

158. Gao, MB; Zhang, W.; Ruan, C. Produzione di taxuyunnanine C significativamente migliorata nelle colture di sospensione cellulare di Taxus chinensis mediante l'intensificazione del processo di sollecitazione ripetuta, alimentazione di saccarosio e adsorbimento in situ. Mondo J. Microbiol. Biotecnol. 2011, 27, 2271–2279. [CrossRef]

159. Chiang, L.; Abdullah, MA Miglioramento della produzione di antrachinoni da colture cellulari in sospensione di Morinda Elliptica trattate con adsorbente nella strategia del mezzo di produzione. Processo Biochimico. 2007, 42, 757–763. [CrossRef]

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